Ⅰ 關於實驗室抽慮除菌的操作
問：最近要做一些培養基，有一些糖類需要過濾除菌，但不知道怎麼操作，還需要什麼輔助設備？
答：你只要有濾膜和配套的過濾器就可以了，一般在超凈工作台上進行。濾膜用0.22微米或0.45微米兩種規格，指的是濾膜的孔徑大小吧。一般0.22就夠了！
答：如果溶液的量比較大，超過500ml，可以採用已滅菌的抽濾瓶，預先墊好0.22um 的濾膜。抽濾瓶滅菌前要檢查封口用紗布或棉花堵牢，使用時，不用在無菌室中進行，只要保證收集瓶無菌狀態就可以。抽濾後，過濾好的溶液在無菌條件下倒進已滅菌的空試劑瓶中。
如果用小量的溶液過濾，無菌室內用一次性注射器和一次性0.22um濾膜（millipore或pall都有賣）就可以。
答：看過濾的量，如果量小，用注射器加濾器、0.22微米濾膜過濾，濾器加上濾膜後蓋緊，稍旋松，飯盒密封100度蒸餾水煮沸30分鍾滅菌，用來承接無菌糖水的瓶需高壓。用時在無菌操作台上操作，並先旋緊濾器，注意濾器外流下去的哪怕一滴也會造成染菌；過濾應該是費力的，如果感覺很輕松，則濾膜已破。0.45微米的濾膜一般用於兩次過濾的第一次，以防止0.22堵塞。注射器，若能高壓更好些。
如果量大，正壓可用蠕動泵接皮管接不銹鋼濾器大張濾膜，這些都是要高壓的。負壓可用抽濾。
Ⅱ 請問制備培養基時如何過濾除菌
1、滅菌方法
培養基的滅菌方法主要有兩種，高壓除菌及0.22um微孔濾膜過濾除菌。與過濾相比，高壓滅菌的工作強度小，成本較低，但易造成營養成分的流失，而且在多次加樣（無菌谷氨醯胺溶液，無菌碳酸氫鈉溶液等）過程中容易造成二次污染。大多數培養基採用0.1～0.2μm孔徑的微孔濾膜進行過濾滅菌，並且已成為培養基除菌的發展方向，它可低限度地減少培養基的營養損失。
1.1 高壓滅菌
某些培養基（如MEM）可進行高壓滅菌，例如清大天一的MEM培養基中的MD605、MD609等。這類培養基一般不含有L-谷氨醯胺和碳酸氫鈉，一般是在培養基高壓滅菌後加入L-谷氨醯胺和碳酸氫鈉的無菌的液體。另外可高壓的谷氨酸鹽（如L-丙氨醯-L-谷氨醯胺）可代替L-谷氨醯胺。
可高壓滅菌的培養基在121℃、15psi，15分鍾的條件下完全可達到滅菌效果及營養成分的最小損失，不需將滅菌時間延長。為保證高壓滅菌的效果，滅菌設備的驗證很關鍵。
1.2 過濾滅菌
可供過濾滅菌使用的濾膜很多，其材料多為polyethersulphone（PES）、尼龍、多聚碳酸鹽、醋酸纖維素、硝酸纖維素、PTFE、陶瓷等。一般情況下採取正壓過濾，正壓過濾較之負壓過濾具有流速高、過濾快、不易污染，可避免蛋白質產生大量氣泡等優點。一般使用過濾器可參照各供應商的產品說明書。
目前大多數實驗室和制葯企業採用微孔濾膜濾器（如Zeiss濾器）或立式微孔濾器（Millipore、Pall）除菌。微孔濾膜濾器為不銹鋼，中間可夾放0.22um濾膜。使用這種濾器最重要步驟是安裝濾膜及無菌過濾過程。如在使用Zeiss濾器時，先要用培養用水將濾膜充分潤濕，在安裝濾膜時可在其上放置一層定性濾紙再固定。消毒時旋鈕不要扭太緊，凡與空氣接觸部位都要包好（可用牛皮紙、紗布、無紡布等）；高壓滅菌後，在無菌環境中立即將旋鈕扭緊。過濾除菌結束後，要打開濾器，檢查濾膜是否完整，如果濾膜破裂，需重新進行過濾除菌過程。立式微孔濾器可以選用不同的微孔濾柱體積，因為濾膜的折疊，膜面積顯著增大，液體處理量大，而且不容易發生堵塞現象。
Ⅲ 實驗室常用的滅菌方法有乾熱滅菌.高壓蒸汽滅菌.紫外線滅菌.過濾除菌四種各有那些優缺點
1.高壓蒸汽滅菌
為濕熱滅菌方法的一種。是微生物培養中最重要的滅菌方法。這種滅菌方法是基於水在煮沸時所形成的蒸汽不能擴散到外面去，而聚集在密封的容器中，在密閉的情況下，隨著水的煮沸，蒸汽壓力升高，溫度也相應增高。壓力和溫度之間的關系見表9－1。
高壓蒸汽是最有效的滅菌法，能迅速地達到完全徹底滅菌。一般在15磅/英寸2壓力下（121.6℃），15～30分鍾，所有微生物包括芽孢在內都可殺死。它適用於對一般培養基和玻璃器皿的滅菌。
進行高壓蒸汽滅菌的容器是高壓蒸汽滅菌鍋。高壓蒸汽滅菌鍋是一個能耐壓又可以密閉的金屬鍋，有立式與卧式兩種。
可以用電熱、煤氣、蒸汽等。鍋上裝有壓力表，有的還裝有溫度計，能及時了解鍋內壓力及溫度。鍋上還設有排氣口，其作用是在密閉之前，利用蒸汽將鍋內的冷空氣排凈，另外還裝有安全活門，如果壓力超過一定限度，活門即可自動打開，放出過多的蒸汽。
2.乾熱滅菌
微生物培養中常用的乾熱滅菌是指熱空氣滅菌。一般在電烘箱中進行。乾熱滅菌所需溫度較濕熱滅菌高，時間也較濕熱滅菌長。這是因為蛋白質在乾燥無水的情況下不容易凝固。一般須在160℃左右保持恆溫3～4小時，方能達到滅菌的目的。
乾熱滅菌適用於空玻璃器皿的滅菌，凡帶有橡膠的物品和培養基，都不能進行乾熱滅菌。
3.間歇滅菌
各種微生物的營養體在100℃溫度下半小時即可被殺死。而其芽孢和孢子在這種條件下卻不會失去生活力。間歇滅菌就是根據這一原理進行的。
間歇滅菌的方法是用100℃、30分鍾殺死培養基內雜菌的營養體，然後將這種含有芽孢和孢子的培養基在溫箱內或室溫下放置24小時，使芽孢和孢子萌發成為營養體。這時再以100℃處理半小時，再放置24小時。如此連續滅菌3次，即可達到完全滅菌的目的。
間歇滅菌通常在流動蒸汽的滅菌鍋中進行，也可用普通鋁鍋代替。這種滅菌方法多用於明膠、牛乳等物質的滅菌，這類物質在100℃以上的溫度下處理較長時間，會被破壞，而用間歇滅菌法就既起到了殺菌作用，又使被處理的物質免遭破壞。
4.紫外線滅菌
紫外線殺菌力最強的是波長2650～2660Å的部分。無菌室緩沖間和接種箱常用紫外線燈作空氣滅菌。無菌室和緩沖間的照射時間為20～50分鍾（視房間大小而定），接種箱照射10～15分鍾即可。
為了加強紫外線滅菌的效果，在照射前，可在無菌室、緩沖間或接種箱內噴灑5%石炭酸，以使空氣中附著有微生物的塵埃降落，同時也可以殺死一部分微生物。無菌室的工作台的檯面和椅子，可用2～3%的來蘇兒擦洗。然後再照射紫外線。由於紫外線對人體有傷害作用，所以人不要直視正在照射的紫外線燈，也不要在照射情況下進行工作。
滅菌後，為了檢驗紫外線的滅菌效果，可以在無菌室、緩沖間或接種箱內放一套盛有培養基的培養皿，將皿蓋打開5～10分鍾，蓋好後，放入溫箱中培養。如果只有一、二個菌落，可認為滅菌效果良好。如雜菌叢生。則需延長照射時間或同時加強其它滅菌措施。
Ⅳ 高中中實驗室過濾裝置的使用
高中實驗室過濾裝置僅使用於不溶性固體與液體的分離
Ⅳ 過濾除菌操作時，濾器和過濾瓶等裝置使用前用什麼設備進行消毒滅菌
過濾除菌操作時,濾器和過濾瓶等裝置使用前用高壓蒸鍋進行消毒滅菌
都需要高回壓滅菌,不過答如果你使用的濾器是進口滅過菌的就不需要了,前提是你沒拆開過。
KRBB液的配方是：NaCl 118.5mmol/L, CaCl2 2.54mmol/L, KH2PO4 1.19mmol/L, KCl 4.74mmol/L, NaHCO325mmol/L, MgSO4 1.19mmol/L, HEPES 10mmol/L, BSA 1%)。 而10mmol/L HEPES緩沖液配製方法如下：准確稱取HEPES 2.383g，加入新鮮三蒸水定容至。
Ⅵ 實驗室用熱過濾裝置有哪些
也就是配個加熱套，根據你不同的過濾器皿，都會有相對應的軟性加熱套，把你的器皿很好的包裹好，進行溫控過濾。
Ⅶ 實驗室過濾和純化的實驗室裝置有哪些
固液分離：
離心機、三角漏斗(過濾)、布氏漏斗(減壓過濾)。
固體純化：重結晶、熔融結晶。
液液分離：
分液、萃取（分液漏斗）
蒸餾、精餾。
Ⅷ 過濾除菌操作時，濾器和過濾瓶等裝置使用前用什麼設備進行消毒滅菌
過濾復除菌操作時,濾器和過制濾瓶等裝置使用前用高壓蒸鍋進行消毒滅菌
都需要高壓滅菌,不過如果你使用的濾器是進口滅過菌的就不需要了,前提是你沒拆開過。
KRBB液的配方是：NaCl 118.5mmol/L, CaCl2 2.54mmol/L, KH2PO4 1.19mmol/L, KCl 4.74mmol/L, NaHCO325mmol/L, MgSO4 1.19mmol/L, HEPES 10mmol/L, BSA 1%)。 而10mmol/L HEPES緩沖液配製方法如下：准確稱取HEPES 2.383g，加入新鮮三蒸水定容至。
Ⅸ 實驗室減壓過濾裝置有哪些
通常指抽濾
主要有真空泵,抽濾漏斗,抽濾瓶,濾紙等
Ⅹ 實驗室常用過濾方法進行凈水．圖為一過濾裝置，該過濾裝置中有幾處錯誤，你能找出來嗎①______②______
圖中無玻璃棒引流，可能會弄破濾紙，使過濾失敗；漏斗的下端沒有緊靠接受的燒杯，可能會使液體外濺．
答案：①沒有用玻璃棒引流②漏斗下端管口沒有靠緊燒杯內壁