实验中直接记录家兔动脉血压的装置是

1. 在家兔动脉血压试验中，暂时夹闭双侧颈总动脉可使

正确答案:E
解析：颈总动脉末端和颈内动脉起始处的膨大部分存在颈动脉窦，其管壁的外膜下有丰富的感觉神经末梢，一般称为压力感受器，与血压调节功能有关
。压力感受器的适宜刺激是管壁的机械牵张
。在夹闭颈总动脉时，相应的颈总动脉末端的颈动脉窦内的压力降低，感觉神经传人的降低血压的神经冲动减少，使交感紧张和交感缩血管活动增强，血压升高
。因此全身动脉血压上升
。故选E
。

2. bl420e生物技能学实验系统做家兔失血性休克时应选中哪一个实验选项

家兔失血性休克

【实验目的】

1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型； 2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变； 3、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理及救治措施。

【实验原理】

休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。

休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。

根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。

对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。

【实验对象】

家兔

【实验器材】

BL-420生物机能实验系统 手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。

【观察指标】

动脉血压（BP） mmHg 中心静脉压（CVP） cmH2O 呼吸（R） 频率、幅度 尿量（U） ml/10min

【实验步骤】

1、 称重麻醉:（乌拉坦5ml/kg）;

2、 固定备皮: 仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮;

3、 血管分离: 颈部正中切口，分离右侧颈外V和左侧颈总A ，穿双线备用; 4、 荷包缝合: 切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口; 5、 肝素抗凝:（耳缘V,1ml/kg）排净空气，尽量靠近远心端，回抽有血;了 6、 血管插管: 结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同;

7、 呼吸装置: 胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器; 8、 0.01%AD（0.2ml） 第一次记录 9、 复制休克（40mmHg,30min） 第二次记录 10、注射NA（耳缘注射,1ml/kg） 第三次记录 11、静脉补液（40～60滴/分） 第四次记录

【注意事项】

1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。 2、牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。

3、动、静脉导管，事先用肝素充盈，排除空气。导管插入后，再推入少量的肝素抗凝，防止导管前端堵塞；静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。

4、血管插管时，结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同：颈外V：先夹闭近心端，后结扎远心端，插入4-5cm；颈总A：先结扎远心端，后夹闭近心端，插入2-4cm。剪口部位尽量靠近远心端，成45度角朝向近心端剪开小口，约为管径的1/3-2/3，插管方向朝向近心端。

5、输液时应注意三通管的使用，输液装置只能单向与静脉导管相通，不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时，需关闭输液通道，使换能器与静脉导管单向相通。

6、第一次实验记录：动物稳定10min后，记录正常状态下；

7、第二次实验记录：颈总A插管的三通开关处断续放血， 血压维持于40mmHg 左右20-30min，建立失血性休克模型。每放血10ml即关闭开关，监测BP变化；血压维持于40mmHg时， 观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）。

8、第三次实验记录：休克动物的抢救措施一：耳缘V缓注1% NA（1ml/kg），观察并记录上述指标变化（重点记录BP上升的最高值及变化时间）

9、第四次实验记录：休克动物的抢救二：静脉输入生理盐水，输液速度---40-60滴/分，输液总量---约为失血量的2-3倍，每输液50ml即观察并记录各项指标的变化。

【实验记录】

结果一：

结果二：

【理想结果】

【注】实验并没有很成功：其中没有进行抢救措施一，所以注射NA后的变化没有记录；抢

救措施二中的生理盐水错误地沿着耳缘静脉输入了，BP,CVP变化不明

3. 家兔动静脉插管结扎与夹闭的方向一样吗

一样，动脉夹夹住的都是近心端，远心端用线扎住

4. 药理学实验，观察家兔动脉血压的调节及药物对血压的影响。先观察正常血压曲线，然后依次注射生理盐水，肾

能够避免细胞破裂，它的渗透压和细胞外的一样，所以不会让细胞脱水或者过度吸水，所以各种医疗操作中需要用液体的地方很多都用它，人体细胞生活中所处液体环境的浓度。为纠正脱水、酸中毒，临床常将不同液体按比例配成混合液应用。

因为严重的婴幼儿腹泻，除丢失碳酸氢钠而产生代谢性酸中毒外，还存在着营养失调性(即所谓“饥饿性”)酮中毒及大量电解质和水分的丢失。所以就需要有既能补充电解质、纠正酸中毒、克服酮中毒，又能补充水分及热卡的混合液。

(4)实验中直接记录家兔动脉血压的装置是扩展阅读：

每搏输出量：在其他因素不变的情况下，每搏输出量增加，收缩压上升较舒张压明显。反之，每搏输出量减少，主要使收缩压降低。

心率：心率增加时，舒张压升高大于收缩压升高。反之，心率减慢时，舒张压降低大于收缩压降低。

外周阻力：外周阻力加大时，舒张压升高大于收缩压升高。反之，外周阻力减小时，舒张压的降低大于收缩压的降低。

大动脉弹性：大动脉管的弹性贮器作用主要起缓冲血压的作用。当大动脉硬变时，其缓冲作用减弱，收缩压会升高，但舒张压降低。

循环血量和血管系统容量的比例：当血管系统容积不变，血量减小时（失血）则体循环平均压下降，动脉血压下降。血量不变而血管系统容积加大时，动脉血压也将下降。

5. 家兔动脉血压的神经体液调节

家兔动脉血压的神经和体液调节
【目的】

本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法，观察神经和体液因素对动脉血压的调节作用。

【原理】

在生理情况下，人和其它哺乳动物的血压处于相对稳定状态，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦－主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可在血压升高时降压，又可在血压降低时升压，反射的传入神经为主动脉神经与窦神经。家兔的主动脉神经为独立的一条神经，也称减压神经，易于分离和观察其作用。在人、犬等动物，主动脉神经与迷走神经混为一条，不能分离。反射的传出神经为心交感神经、心迷走神经和交感缩血管纤维，心交感神经兴奋，其末梢释放去甲肾上腺素，去甲肾上腺素与心肌细胞膜上的b受体结合，引起心脏正性的变时变力变传导作用，心迷走神经兴奋，其末梢释放乙酰胆碱，乙酰胆碱与心肌细胞膜上的M受体结合，引起心脏负性的变时变力变传导作用，交感缩血管纤维兴奋时释放去甲肾上腺素，后者与血管平滑肌细胞的a-受体结合引起阻力血管的收缩。

本实验应用液压传递系统直接测定动脉血压。即由动脉插管、测压管道及压力换能器相互连通，其内充满抗凝液体，构成液压传递系统。将动脉套管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过密闭的液压传递系统传递压力，通过压力换能器将压力变化转换为电信号，用微机生物信号采集处理系统记录动脉血压变化曲线。

【预习要求】

1．仪器设备知识 参见第二章第三节 RM6240微机生物信号采集处理系统（或第四节PcLab和MedLab微机生物信号采集处理系统）。

2．实验理论 实验动物知识参见第三章第一节 生理科学实验常用实验动物的种类；第四章第一节 动物实验的基本操作、第四节 实验动物手术；统计学知识参见第5章第四节 常用统计指标和方法；生理学教材有关动脉血压的调节。检索全文数据库中的相关研究论文，检索方法参见第五章第五节。

3．预绘制实验原始数据记录表格和统计表格。

【材料】

家兔，动脉插管，血压换能器，生物信号采集处理系统，200g/L氨基甲酸乙酯，1000U/ml的肝素，0.1g/L去甲肾上腺素，10-2g/L乙酰胆碱。

【方法】

1．实验系统连接及参数设置

（1）颈动脉血压测量记录装置。将血压换能器固定于铁支柱上，其位置应与心脏在同一平面。

（2）压力换能器输出线接微机生物信号处理系统第4通道（亦可选择其它通道）。微机生物信号处理系统参数设置：

① RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“循环”或“自定义实验项目”菜单中的“兔动脉血压调节”。系统进入该实验信号记录状态。仪器参数：4通道时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa，采样频率800Hz，扫描速度 500ms/div。连续单刺激方式，刺激强度5~10V，刺激波宽2ms，刺激频率30 Hz。

② PcLab和MedLab系统：点击“文件”菜单“打开配置”中的“动脉血压记录”项目。系统进入该实验信号记录状态。仪器参数：1通道放大倍数200、直流（DC）耦合，采样间隔1ms；串刺激方式，波宽2ms，刺激强度5~10V，时程1s，频率30 Hz。

（3）血压换能器定标 为定量记录血压及血压变化的幅度，测量系统需在记录之前定标。定标方法：在见图7-16-1中，三通连接水银检压计和充以生理盐水的注射器，打开弹簧夹使与大气相通，仪器开始记录，并将通道基线调至与零线重合。注射器缓慢注水，排尽空气，夹上弹簧夹。继续注水，使水银检压计压力达到24.0Kpa（180mmHg）。保持采样一段时间，打开微机生物信号处理系统定标（单位修正）对话框，输入水银检压计指示的压力值。实验过程中不能改变定标数值。

实验室一般情况下已将仪器和血压换能器系统进行了定标，无须再定标。

2．手术准备（参见第四章第一节 动物实验的基本操作、第四节 实验动物手术）

（1）家兔称重后，氨基甲酸乙酯按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射麻醉。注意麻醉剂不能过量，注射速度不宜过快。

（2）动物仰卧固定缚于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳钩住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。

（3）暴露颈部气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经和减压神经。用玻璃分针仔细分离右侧上述神经，穿细丝线。分离两侧颈总动脉和两侧颈静脉，各穿一线备用。

（4）给动物静脉注射肝素，剂量为1000u/kg体重。等1分钟后再进行下一步骤，以使肝素在体内血液中混合均匀。

（5）颈总动脉插管 左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面预先穿一丝线备用。用眼科剪在靠近结扎处动脉壁剪一“V”字形切口，将动脉套管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。打开动脉夹。

【模拟实验操作方法】

1．模拟实验窗口（图6-2-7） 家兔颈部动脉插管用三通压力换能器与水银检压计相连，水银检压计指示动脉血压，家兔呼吸运动用其腹部动画展现，并与仿真记录仪记录的血压曲线二级波同步。

2．手术刀 鼠标点击手术刀并拖动至家兔颈部释放，启动动脉插管录像，动脉插管录像结束，记录仪描记动脉血压曲线。鼠标点击手术刀并拖动至家兔颈部手术放大图的神经上方释放，切断神经。

3．仿真三道记录仪 第一道记录动脉血压曲线，第二道记录心率，第三道记录实验项目标记。仿真记录仪面板设灵敏度、位移、纸速调节按钮，面板设数字显示框，分别显示记录仪第一道灵敏度、动脉血压、心率、实验项目。

4．刺激器 打开电源开关后，鼠标器点击刺激电极拖动至家兔颈部手术放大图的神经上方释放，释放位置不同、可分别产生刺激迷走神经中枢端、迷走神经末梢端、主动脉神经中枢端、主动脉神经末梢端引起的动脉血压变化。

5．注射器 鼠标器点击注射器拖动至家兔耳部上方释放，向输入框输入药品剂量，点击确定，药品从家兔耳缘静脉注入。动脉血压因药物作用而发生变化，药品剂量1:10000 去甲肾上腺素 0.3ml。

6．测量按钮 按测量按钮，仿真记录仪显示所做实验项目的实验曲线，仿真记录仪面板按钮变为图标按钮，有放大、缩小、压缩、扩展、定位图标按钮，分别可使仿真记录仪内的实验曲线纵向放大或缩小，横向压缩或扩展，定位图标按钮可使所选记录曲线处的位置移到仿真记录仪左边框。

7．测量状态 在测量状态下，鼠标器在仿真记录仪内移动，可对实验曲线进行测量，并从仿真记录仪的面板数字显示框“血压”和“Time”中读出血压值和心动周期时间。在曲线上点击，可测量相对值。拖动仿真记录仪面板上的滚动条，可使实验曲线左右滚动，显示前后实验数据曲线。

6. 关于测量家兔血压实验的问题

异丙是非选择β激动药，小剂量可使舒张压下降，压差增大，大剂量使血压明显下降。

心得安适用于临床上疑有自主神经系统功能紊乱，同时伴有窦性心动过速、心悸、气短、多汗、失眠等，心电图T波低平或轻度倒置、ST段轻度压低者。

7. 传出神经系统药物对兔动脉血压的影响实验讨论怎么写

1．实验装置 计算机Biolap98软件系统的使用：打开计算机,显示windows桌面.点击图标“biolap98”,进入BL-310智能型生物信号显示与处理系统.点击“可进行生理、药理、毒理、病理等实验”,进入主画面.点击菜单“输入信号”栏,选择通道1及标Ⅱ导联显示动物心电,通道2显示压力曲线；点击菜单“显示方式”栏,选择双通道显示方式.调节增益至100左右,时间常数为“DC”,滤波用“1kHz”.
如用多道生理记录仪,则打开电源后,校正两个通道的扫描电压,并调节增益至适当位置.打开记录仪,调节描笔的位置,校正描笔的摆动幅度.
电子刺激器的准备 打开电源,选择“连续”刺激方式,波宽为0.5ms,电压为2～3V,频率为16Hz.将刺激电极连接于刺激器.
检查血压换能器,用石蜡油将其充满,将换能器三通管与动脉插管的导管相连,将换能器导线与计算机或多道生理记录仪相连.
2．准备动物 秤重后,用20%氨基甲酸乙酯按每公斤体重1克的剂量从耳缘静脉缓慢注入,动物麻醉的标志为四肢松软,角膜反射消失.麻醉后用绳子将动物背位固定于手术台上,打开手术台底部的电灯保温.剪去颈部手术野的毛以便施行手术.
3．手术 沿颈部正中线切开皮肤6～7厘米,用止血钳沿正中线分离皮下组织及肌肉（胸舌骨肌）,暴露出气管.用两把组织钳分别夹住气管两侧的皮肤和肌肉的边缘,并将其拉向两侧,即可见到气管两侧与气管平行的左、右颈总动脉及与其相伴而行的一束神经,这束神经中包括迷走神经、交感神经和减压神经.由于神经被包绕于动脉鞘中,所以应小心分离颈动脉鞘,仔细辨认三条神经.迷走神经最粗,交感神经较细,减压神经最细且常与交感神经紧贴再一起.一般先分离颈总动脉与迷走神经,然后分离减压神经与交感神经.每条神经各分离出2～3厘米,并在各神经下穿一条不同颜色的丝线以便区别和使用.右侧颈总动脉下穿一条线备用,左侧颈总动脉用于血压测量,在其远心端（头端）和近心端各穿一条线备用.

8. 兔动脉血压实验中，夹闭一侧颈总动脉，血压发生什么变

实验中夹闭家兔一侧的颈总动脉，家兔的血压升高，心率加快，原因是：实验中夹闭家兔一侧的颈总动脉后，颈动脉窦压力感受器感知的血压降低，感觉传入延髓心血管中枢，引起心血管中枢兴奋，经交感神经引起心跳加速、心肌收缩力增强，引起家兔的血压升高和心率加快。

颈动脉窦是一个压力感受器，适宜刺激是血液对动脉血管壁的机械牵张，通过感受动脉血压的改变而调节循环。颈动脉体是一个化学感受器，适宜刺激是血液中化学成分的变化，比如：血氧、二氧化碳、血液PH值等，从而对循环和呼吸系统产生调节作用。

(8)实验中直接记录家兔动脉血压的装置是扩展阅读：

夹闭颈总动脉，此时的颈动脉小球流经的血流减少，反射性的引起升压反应，尼可刹米可直接兴奋延髓呼吸中枢，并通过刺激颈动脉窦和主动脉体化学感受器反射性地兴奋呼吸中枢，提高对二氧化碳的敏感性，使呼吸加深加快。

夹闭一侧颈总动脉，该侧颈总动脉血流中断，局部血压明显下降，刺激颈动脉窦压力感受器，提示血压下降，又通过神经体液一系列机制升高血压，主要表现为心率加快，血压升高。