離體心臟灌流實驗裝置

㈠ 蛙心灌流實驗方法步驟誰能介紹下！

蛙心灌流實驗方法 原理
作為蛙心起搏點的靜脈竇能按一定節律自動產生興奮，因此，只要將離體的蛙心保持在適宜的環境中，在一定時間內仍能產生節律性興奮和收縮活動。心臟正常的節律性活動需要一個適宜的理化環境，離體心臟也是如此，離體心臟脫離了機體的神經支配和全身體液因素的直接影響，可以通過改變灌流液的某些成分，觀察其對心臟活動的作用。心肌細胞的自律性、興奮性、傳導性和收縮性，都與鈉、鉀及鈣等離子有關。血鉀濃度過高時(高於7.9mmol/L)，心肌興奮性、自律性、傳導性、收縮性都下降，表現為收縮力減弱、心動過緩和傳導阻滯，嚴重時心臟可停搏於舒張期。血鈣濃度升高時，心肌收縮力增強，過高可使心室停搏於收縮期。血鈣濃度降低，心肌收縮力減弱。血中鈉離子濃度的輕微變化，對心肌影響不明顯，只有發生明顯變化時，才會影響心肌的生理特性。腎上腺素可使心率加快、傳導加快和心肌收縮力增強，乙醯膽鹼則與腎上腺素的作用相反。蛙心灌流實驗方法步驟生物幫上面有詳細的介紹
MTT方法 http://doc.bio1000.com/show-3390.html

㈡ 離體蛙心灌流實驗ip是什麼

離體蛙心灌流實驗ip是動物的離體心臟，用理化特性類似於其血漿的代體液灌流時，在一定的時間內，仍然保持有節律的舒張活動。改變灌流液的理化特性，這種節律的舒縮活動也隨之發生改變，說明內環境理化因素的相對恆定是維持心臟正常節律活動的必要條件。

1921年Otto Loewi通過離體雙蛙心灌流實驗證明遞質的存在。當刺激甲蛙心使迷走神經興奮時，甲蛙心受到抑制，這時將甲蛙心的灌注液注入乙蛙心，則乙蛙心也表現出抑制。這就說明甲蛙心迷走神經興奮時，必定釋放出一種抑制性物質，才能使乙蛙心也受到抑制。

實驗注意事項：

1、每次換液時，液面均應保持一定的高度。

2、每次換入灌流液或滴加試劑出現明顯效應後，應立即吸出全部灌流液，並以新鮮任氏液換洗2~3次，待心跳恢復正常後，再進行下一步驟。

3、每次加入 試劑 後，應立即用滴管輕輕攪勻，使之迅速發揮作用。

4、加試劑時，每次不宜過多，先加1~2滴，如作用不明顯時可再補加。

5、隨時滴加任氏液於心臟表面使之保持濕潤狀態。

6、固定張力換能器時，應稍向下傾斜，以免自心臟滴下的水流入張力換能器內。

以上內容參考網路-化學傳遞學說

㈢ 什麼是離體心臟

離體心臟一般是將動物心臟取出，連接到特定的灌流裝置，用來做實驗用的。
用灌流液灌注，排除了神經和體液的控制，配合特別分析軟體記錄心室內壓、動脈血壓和心電信號，自動分析各項生理參數，用於病理生理情況下的心功能與血流動力學改變等研究，在生理、病理生理以及葯理學研究中已得到廣泛地應用

㈣ 心臟灌流實驗

由於主動脈瓣方向是開向主動脈的，因此不管水是經主動脈灌入了左心室還是只是灌入主動脈沒有進入左心室，最後都是會從主動脈流出的。這是由主動脈的單向開放特性所決定的。

㈤ 急求蛙類離體心臟灌流實驗報告

離 體 蛙 心 灌 流

[實驗目的]
1．學習離體蛙心灌流的實驗方法。
2．觀察Na、K、Ca三種離子及腎上腺素、乙醯膽鹼等因素對心臟活動的影響。

[實驗原理]
1．心臟的正常節律性活動需要一個適宜的內環境，內環境的變化直接影響著心臟的正常活動。本實驗在蛙心的灌流液內人為地加入一些物質而改變心臟活動的內環境，觀察心臟活動有何變化。

2．心肌細胞分類
收縮性 興奮性 傳導性 自律性
非自律細胞， 心房肌，心室肌細胞 有 有 有 無
自律細胞， p細胞，浦肯野細胞 無 有 有 有

快反應細胞：心房肌，心室肌，浦肯野細胞：主要由快鈉通道被激活，Na快速內流引發動作電位，去極速度快
慢反應細胞：竇房結細胞，房室交界區細胞：主要由慢鈣通道被激活，Ca內流引發動作電位，去極速度慢

3．心肌細胞的生理特徵： 電生理特徵：自律性，興奮性，傳導性
機械生理特徵：收縮性

影響心肌細胞電生理因素
影響心肌細胞興奮性因素
（心室肌細胞） 影響心肌細胞自律性因素
（竇房結細胞） 影響心肌細胞傳導性因素
（房室交界區細胞）
靜息電位水平與閾電位水平之間的差距 4期自動除極的速度 結構因素：直徑
鈉通道狀態 最大復極電位水平與閾電位水平之間差距 動作電位0期去極速度和幅度
鄰近部位膜的興奮性

心肌細胞興奮－收縮耦聯過程所需的Ca要從細胞外液轉運，細胞興奮時，膜上Ca通道開放，因此：
細胞外液Ca濃度↑――細胞興奮時內流Ca↑――心肌收縮力↑
反之亦然

4．1％KCl： 即134mmol/ L（正常：4mmol／L）
輕，中度高鉀：
細胞外K↑――K與Ca在細胞膜上有競爭性抑制――K抑制細胞膜對Ca轉運――進入細胞內Ca↓ ――心肌的興奮收縮聯過程減弱――心肌收縮力↓
[K] ↑――膜內外k濃度梯度減小――靜息電位絕對值減小――興奮性↑
[K] ↑――細胞膜對k通透性增加――K通道失活V↓――自動去極化V↓――自律性↓
[K] ↑――細胞膜對k通透性增加――K外流增加――最大復極電位↑――自律性↓
[K] ↑――Ca內流受抑制――0期去極速度和幅度降低――傳導性降低

重度高鉀：
[K]↑↑――RP↓――Na通道失活――興奮性喪失

5．2％CaCl2： 即180mmol/L（正常：2mmol／L）
細胞膜外Na與Ca有競爭性抑制
細胞外液Ca濃度↑――細胞興奮時內流Ca↑――心肌收縮力↑

快反應細胞：
高Ca――Na內流抑制――0期去極化速度及幅度下降――傳導性↓
慢反應細胞：
高Ca――Ca易進入細胞，Ca內流增加――0期去極化速度增加――傳導性↑

6． O. 65％NaCl ： 111mmol／L
細胞外Ca↓――2期內流Ca↓――胞漿Ca 濃度↓――心肌收縮↓

[Ca] ↓――Ca內流減少――0期去極化速度減慢――傳導性↓

[Ca] ↓――Ca不易進入細胞――4期自動除極的速度減慢――自律性↓

7：腎上腺素 正性變化
腎上腺素與心肌細胞膜上的β1受體結合――心肌細胞和肌漿網膜Ca通透性↑――肌漿中Ca濃度增加――心肌收縮↑
使K通道，Na通道，Ca通道都開放，------
慢Ca通道-----
8：乙醯膽鹼 負性變化
乙醯膽鹼與心肌細胞膜上的M受體結合――心肌細胞膜K通道的通透性↑――促k外流――
1：竇房結細胞復極時K外流↑――最大復極電位水平↑――自律性↓
2：復極時K外流↑――AP 2,3期縮短――Ca進入細胞內↓――心肌收縮↓

乙醯膽鹼可直接抑制Ca通道――Ca內流↓――心肌收縮↓

[實驗對象] 青蛙或蟾蜍
[實驗器材和葯品]
1．器材 生物信號採集系統、機械換能器、蛙類手術器械1套、蛙心插管、蛙心夾、試管夾、雙凹夾、萬能支架、滴管、150ml小燒杯4個、任氏液。
2．葯品 O. 65％氯化鈉、2％氯化鈣、1％氯化鉀、1：10 000腎上腺素、1，10 000乙醯膽鹼等。
[實驗步驟]
1 離體蛙心的制備
(1)取1隻蟾蜍，破壞腦和脊髓，仰卧固定於蛙板上，用外科剪由劍突處向兩鎖骨肩峰端呈三角形剪開皮膚，用粗剪刀剪開胸壁，用圖釘固定兩前肢，用鑷子提起心包膜，用眼科剪將其剪開，暴露心臟。
(2)在兩個主動脈干下各穿兩根細線（一根用來結扎腔靜脈，另一根用來結扎蛙心插管和主動脈），並將其中一根打一活結備用。
(3)將心臟上翻，辨認心房，靜脈竇，腔靜脈，然後結扎腔靜脈。
(4) 用左手提起結扎線，右手用眼科剪在左側主動脈距分叉部3mm處剪一「v」型口。將盛有少量任氏液的蛙心套管(用拇指將套管堵住，以防套管中的任氏液流出)從「v」型口插入動脈球底部，然後稍後撤套管，再將蛙心管尖端轉向蟾蜍的背側及左下方，於心縮期插入心室內。插管如已進入心室，可見管中液面隨著心搏而升降，此時即可將預置線的活結扎緊，並固定於插管壁的小鉤上。
(5) 小心提起套管和心臟，剪斷主動脈左右分支；將心臟連同靜脈竇一起剪下。
(6)吸去管內的血液，並用任氏液反復沖洗心室內的余血，以防血液凝固而影響實驗的
進行。用連有細線的蛙心夾在心舒期夾住心尖部。（心尖大，夾組織少，不易損傷心臟）

2．實驗裝置
將蛙心插管用試管夾固定於支架上，蛙心夾的連線連接在機械換能器上。換能器的輸出線與計算機的「輸入」端相連。打開計算機，進入「蛙心灌流」界面。調節實驗參數，開始記錄心臟收縮曲線。

3．觀察項目
(1)記錄心臟在僅有任氏液時的收縮曲線，觀察心率及收縮幅度，作為正常對照。
(2)吸去管內的任氏液，換以等量0.65％Nacl，觀察並記錄心跳的變化。
(3)等量任氏液換洗，待心跳恢復正常後，加入2％Cacl 1—2滴，記錄觀察心跳的變化。
(4)等量任氏液換洗，待心跳恢復正常後，加入l％Kcl 1～2滴，記錄觀察心跳的變化。
(5)等量任氏液換洗，待心跳恢復正常後，加入1：l0 000腎上腺素1～2滴，記錄並觀察心跳的變化。
(6)等量任氏液換洗，待心跳恢復正常後，加入l：10 000乙醯膽鹼1～2滴，記錄並觀察心跳的變化。

4．實驗結果的處理 對正常心臟收縮曲線和各項實驗所得結果均應在實驗時進行標記，然後整理並附在實驗報告單上，對實驗結果進行理論上的解釋。

收縮幅度 收縮頻率
正常
KCL ↓ ↓
CaCl ↑ ↑
NaCl ↓ ↓
E ↑ ↑
Ach ↓ ↓

[注意事項]
1．蛙心夾應一次性夾住心尖，不宜夾多次，以免損傷心臟。
2．蛙心夾與換能器簧片的連線應呈一定的傾斜度，以防溶液滴入換能器。
3．當各項實驗效果明顯後，應及時將插管內的溶液吸出，至少用任氏液反復沖洗2～3次，待心跳恢復正常後，再進行下一項實驗。
4．各種溶液的滴管應分開，不要混用。
5．在實驗過程中，基線的位置、放大倍數、掃描速度一經調好後不要再變動。
6．在各項實驗中，蛙心插管內灌流液的液面高度應始終保持一致，以保證心臟固定的負荷。
7．每一項實驗，均應先記錄一段正常對照曲線，然後再加入葯液並記錄其效應。
8．腎上腺素：加2-3滴，可多次使用 乙腺膽鹼：必須最後一次滴加 NaCl：全換 其餘：從一滴加起

[思考題]
1．給人體快速靜脈注射鉀離子，會有什麼樣的結果?
2．蛙心插管內灌流液是心臟的什麼負荷?
3．正常體內腎上腺素、乙醯膽鹼等化學物質來自何處?

㈥ 常用生物醫學儀器有哪些

1、立體定位儀

立體定位儀（stereotaxic instrument）由固定動物頭部的耳扦、門齒鉤及三維可調的電極架組成。參照某種動物腦圖譜上標定的某一腦結構的三維坐標，調好儀器的三維定向標尺，即可將電極或針頭准確插入此動物的腦結構中。

2、老鼠斷頭器

老鼠斷頭器是神經解剖,神經生理,神經葯理和神經外科等領域內的重要研究設備，其別名又可稱為嚙齒動物斷頭器。多用於小白鼠實驗。

3、肺功能測試儀

個人肺功能儀可以進行肺功能測試並追蹤肺部健康情況，可測量包含FVC、FEV1、FEV1/FVC等常用肺功能檢測參數。

4、離體動物心臟灌流裝置

Langendorff離體心臟灌流系統是配合做離體心臟灌流實驗的一套系統，適用於離體哺乳動物心臟灌流（langendorff氏法）和離體心臟冠脈流量（coronaryfilw.cf）的測定．可直接進行恆壓灌流，加上蠕動泵可進行恆流灌流。

5、微量注射泵

微量注射泵（簡稱微量泵）是一種新型泵力儀器，將少量流體精確、微量、均勻、持續地輸出。由控制器，執行機構和注射器組成。

㈦ 心臟灌流實驗。生物高手進

首先我們先明白心臟位置的血液循環順序，上下腔靜脈、冠狀竇→右心房→右心室→肺動脈→肺循環→肺靜脈→左心房→左心室→主動脈→體循環→上下腔靜脈；

其次我們強調下解題關鍵：左右心房之間和左右心室之間均由間隔隔開，故互不相通，而心房與心室之間有瓣膜，這些瓣膜使血液只能由心房流入心室，而不能倒流。

下面我們開始答題：
（1）若由上腔靜脈灌入，則按照上下腔靜脈→右心房→右心室→肺動脈的順尋，無疑水會從肺動脈流出，這是血液循環的作用；
（2）若由肺靜脈灌入，則按照肺靜脈→左心房→左心室→主動脈→體循環的順序，水是從主動脈流出的；
（3）若由主動脈或肺動脈灌入，水是沒有流出口的，或者說是從主動脈或肺動脈流出，這是因為在肺循環不存在的情況下，肺動脈瓣有防返流作用

最後的建議是，高中時我記得答題的時候只要記得剛開始的血液循環順序，然後按照順序一個一個看就可以了，所以請LZ同學好好參謀下答題中（1）（2）（3）所謂順序和剛開始血液循環順序的對應，希望這個所謂血液循環不要成為生物部分的難題~

㈧ 離體器官需要滿足什麼條件

離體器官需要滿足已下條件：

1，要低溫保存，低溫可以減慢代謝，使器官能夠更好地對抗缺氧。

2，需要用專門的器官保存液對器官進行灌流，除去其中的血液。可以採取灌流後低溫保存或持續灌流的方法。

機械連續灌流的方法主要針對於腎臟。器官保存液的作用是防止細胞水腫、破壞並盡可能維持器官功能。器官保存液有多種配方，常見的比如UW液、HTK 液等。

(8)離體心臟灌流實驗裝置擴展閱讀：

離體組織器官恆溫灌流系統：

離體組織恆溫器官灌流系統是針對當前醫學院校及科研機構的葯理實驗自主研發的實驗裝置系統之一，主要用於血管環、肌條張力測量的實驗裝置。

它提供帶氧氣輸入的數控恆溫環境，從而保持離體組織器官的生理活性，使相關實驗順利進行。適合用於血管、平滑肌、心肌、冠狀動脈、大腸等組織器官的生理學以及葯理學研究。

離體組織器官恆溫灌流系統有2種型號，後面的數字表示有四路和八路的恆溫通氧組織灌流腔或者是四路和八路充分預熱的數控恆溫環境，充分保證離體組織器官的生理活性，使相關實驗長時間進行。