配置大量元素母液需要什麼儀器

Ⅰ 胡蘿卜組織培養實驗

取材部位應在胡蘿卜去皮之後的邊緣，胡蘿卜中間的木質部和髓質部相對來說分化程度更高，因而胡蘿卜的皮質部更適合用來做這個實驗。胡蘿卜組培的營養配方一般採用MS培養基，下面是配製分裝及滅菌：
按表用量筒移取大量元素母液100ml，用專一對應的移液管分別吸取微量元素母液10mi、鐵鹽母液10ml、有機物母液（維生素）10ml，均置人1000ml定容瓶中，若不加任何激素，則為MSo培養基；若需加激素按配方移取激素母液即可。
將已裝母液的定容瓶用蒸餾水或自來水定容到1000ml，取1／3左右倒人小鋁鍋中加熱。同時，稱好30g蔗糖，稱瓊脂絲7g(或瓊脂粉)，也傾人小鋁鍋中，邊加熱邊攪拌，防止
糊底。旺火煮開，再用文火加熱，直至瓊脂全部融化即清澈見底為度。(若用瓊脂粉，應加入100ml左右的液體培養基，並攪拌均勻)。然後再傾入定容瓶內餘下的液體培養基，搖晃均勻即可。
培養基配好後，要調整pH值。用0.1M的NaOH或HCl液調PH6.4—6.5。在培養基配方不大變動的情況下可用經驗法。可以將連續三次測定所加入的酸或鹼液的平均值作為以後調整的用量值。調後注意一定要搖動均勻，還要注意酸或鹼液不要放置時間太久。
培養基合成後要趁熱分裝，100ml的容器約裝入30～40ml培養基，即1L培養基約裝35瓶左右。太多則浪費培養基，太少不易接種和影響生長。但要根據培養對象來決定。如果培養時間較長時，應適當多裝培養基，生根等短期培養時，可適當少加培養基。分裝時不要把培養基弄到管壁上，以免日後污染。裝後用封口材料包上瓶口，扎口後，寫上培養基種類，准備滅菌。注意不能放置時間過長，以免產生污染。
培養基用高壓滅菌。打開鍋蓋，加水至水位線。把已裝好培養基的三角瓶，連同蒸餾水及接種用具等放人鍋筒內，裝時不要過分傾斜培養基，以免弄到瓶口上或流出。然後蓋上鍋蓋，對角旋緊螺絲，接通電源加熱，當升至0.05MPa時，打開放氣閥放氣，回「0」，後關閉放氣閥。當氣壓上升到0.10MPa時，保壓滅菌20min，到時停止加熱。當氣壓回「0」後打開鍋蓋，取出培養基，放於平台上冷凝。滅好的培養基不要放置時間太長，最多不能超過1周。

如果有什麼不好的地方，請多指教。

Ⅱ 化學實驗——配置一定濃度溶液需要哪些儀器 把作用也說一說

容量瓶:配製一定體積的溶液
托盤天平 :稱質量
葯匙：取固體葯品
量筒 ：量液體葯品
玻璃棒 ：攪拌,加速溶解,轉移液體
燒杯 ：盛液體

Ⅲ 母液配置前稱重物品應該

母液配置前稱重物品應該培養基中的許多營養元素含量較少，如果每次配置培養基時都稱量各種元素，既繁瑣叉很難稱量准確。為了節省時間，便於操作，在實際操作時。應先配成高濃度的母液，然後再吸取一定量的母液配製成所需濃度的培養基。工作母液能夠簡化培養基配製程序，從而節約大量的人力、時間，同時減少每次少量稱量配製的誤差。配製培養基最方便的方法是預先配製好不同組分的培養基母液，配成培養基配方使用濃度的10倍或100倍，甚至1000倍。這些母液包括無機鹽、維生素以及在水溶液中穩定的生長調節物質等。平時應貯存在2-4℃冰箱內，待做培養基時取出，按比例稀釋配用。母液的配製有兩種方法：一種是配製成單一化合物母液；另一種是配成幾種不同化合物的混合母液。前一種方法適合配製多種培養基都需要的同一種母液；後一種方法在大量配製同種培養基時省時省力。
現以MS培養基配製為例，在配製母液時為減少工作量可以把幾種葯品（如培養基中的大量元素或微量元素）配在同一母液中（表3-2），但應注意各種化合物的組合以及加入的先後順序，以免發生沉澱。通常把每種試劑單獨溶解後再與別的也已完全溶解的葯品混合，或者待前一種化合物完全溶解後再加入後一種化合物。混合已溶解的各種礦質鹽時還應注意先後順序，力求把Ca2＋與SO42-和PO43-錯開，以免形成硫酸鈣或磷酸鈣的不溶物。同時，要慢慢的混合，邊混合邊攪拌。

Ⅳ 培養基的配製操作技術大量元素,要用多大的容量瓶

培養基配製程序如下：

1. 將貯存的各種母液按順序依次放好。

2. 將各種潔凈的玻璃器皿如培養瓶、量筒、燒杯、吸管、玻璃棒、漏斗等，放在指定的位置。准備好蒸餾水或無離子水及瓶蓋或封口膜、包紙、橡皮筋等。

3. 稱取規定量的瓊脂和蔗糖，將瓊脂置於精鋼鍋或者電飯煲中，加水至培養基最終容積的3/4或1/2，隨之加熱使之溶解，注意防止煳鍋底和溢出。瓊脂必須完全溶化，以免造成濃度不均。

瓊脂不能過多，不然會導致培養基太硬，含水太少，通氣不良;反之，培養基太軟，植物材料則難以固定。由於瓊脂較難溶解，所以在制備培養基時，應首先加熱溶解。

4. 按母液順序，根據不同母液的濃縮倍數移取規定的量，如配製1L MS培養基移取濃縮10倍的大量元素母液為100mL。母液加完後，再經過計算加入所需要的植物生長調節劑。

在加入母液或生長調節劑時，應事先檢查這些葯品是否已經變色或產生沉澱，若出現這些現象就停止使用。加完後一並倒入已溶化的瓊脂中，並再加入蔗糖。

5. 加蒸餾水定容至培養基的最終容積。

6. pH值調整。培養基的pH值(酸鹼度)直接影響培養物對離子的吸收，所以過酸或過鹼都會影響植物的生長。此外，瓊脂培養基的pH值還影響到其凝固程度，所以當培養基配製好以後，應隨即進行pH值的調整(一般pH值為5.6-6.0)。

最好是用酸度計測試，即快又准，如無此設備也可以用精密pH試紙(應在乾燥容器中保存，以免吸潮而失效)。若培養基偏酸就用1mol/L的氫氧化鈉來調節，偏鹼則用1mol/L的鹽酸來調節。

經高壓蒸汽滅菌後，由於某些成分的分解(如蔗糖)或氧化，使培養基的pH值會降低(一般會降低0.2左右)。有時玻璃皿質量較差，其中一部分物質溶解，也會影響酸度的變化，這些再調整培養基的pH值的時候都要考慮進去。

一般在比較成熟的情況下，會在培養基高壓蒸汽滅菌前調高一定的pH值，以便適應滅菌後pH值下降的問題，具體調高多少可根據自身實驗摸索。

7. 培養基的分裝。瓊脂約在40℃以下時凝固，因此配製好的培養基要趁熱分裝，分裝時一般用燒杯、漏斗直接精選分注。若條件允許，用培養基灌裝機來分注會更加方便。

分裝時要掌握好分注量，多了即浪費又減小培養物的生長空間;少了又會因營養不足而影響生長，一般以占培養容器1/4 - 1/3左右為宜，培養基在培養容器中的厚度約為1.5cm。

分裝時要注意不要將培養基沾到管壁上，以免引起污染。分裝後立即塞上棉塞或者蓋上瓶蓋或封好封口膜，並在培養瓶上貼標簽或用記號筆在瓶壁上作好標注，然後進行滅菌。

Ⅳ 植物克隆用母液的配製和培養基的配製

為了避免每次配製培養基都要對幾十種化學葯品進行稱量，應該將培養基中的各種成分，按原量10倍、100倍或1000倍稱量，配成濃縮液，這種濃縮液叫做母液。這樣，每次配製培養基時，取其總量的1/10、1/100、1/1000，加以稀釋，即成培養液。現將培養液中各類物質制備母液的方法說明如下。
(1)大量元素。大量元素包括硝酸銨等用量較大的幾種化合物。制備時，按表中排列的順序，以其10倍的用量，分別稱出並進行溶解，以後按順序混在一起，最後加蒸餾水，使其總量達到1升，此即大量元素母液。
(2)微量元素。因用量少，為稱量方便和精確起見，應配成100倍或1000倍的母液。配製時，每種化合物的量加大100倍或1000倍，逐次溶解並混在一起，製成微量元素母液。
(3)鐵鹽。鐵鹽要單獨配製。由硫酸亞鐵（FeSO4·7H2O）5.57克和乙二胺四乙酸二鈉（Na—EDTA）7.45克溶於1升水中配成。每配1升培養基，加鐵鹽5毫升。
(4)有機物質。主要指氨基酸和維生素類物質。它們都是分別稱量，分別配成所需的濃度（0.1～1.0毫克/毫升），用時按培養基配方中要求的量分別加入。
(5)植物激素。最常用的有生長素和細胞分裂素。這類物質使用濃度很低，一般為0.01～10毫克/升。可按用量的100倍或1000倍配製母液，配製時要單個稱量，分別貯藏。
配製植物生長素時，應先按要求濃度稱好葯品，置於小燒杯或容量瓶中，用1～2毫升0.1N（克當量濃度）氫氧化鈉溶解，再加蒸餾水稀釋至所需濃度。配製細胞分裂素時，應先用少量0.5或1N的鹽酸溶解，然後加蒸餾水至所需量。
以上各種混合液（母液）或單獨配製葯品，均應放入冰箱中保存，以免變質、長霉。至於蔗糖、瓊脂等，可按配方中要求，隨稱隨用。
培養基的配製（1）
稱取規定數量的瓊脂和蔗糖，加入一定量的蒸餾水，加熱使其溶解。（2）在燒杯中加入規定量的各種母液，包括生長調節物質和其他的特殊補加物。（3）
將母液混合物加入融化的瓊脂中，再加入糖類物質，定容至所需體積，攪勻。（4）
用1mol/L的氫氧化鈉和鹽酸調節pH值。（5）趁熱將培養基分裝到所選用的培養容器中。（6）用棉塞或封口膜蓋住瓶口。（7）在121-126℃滅菌15-20min。（8）滅菌後，待壓力歸零後將培養基取出讓其凝固。

Ⅵ MS培養基一共有幾種母液分別什麼組分，如何配置

培養基母液的配製和保存 MS培養基含有近30種營養成分，為了避免每次配製培養基都要對這幾十種成分進行稱量，可將培養基中的各種成分，按原量的20倍或200倍分別稱量，配成濃縮液，這種濃縮液叫做培養基母液。
這樣每次使用時，取其總量的1/20（50 mL）或1/200（5 mL），加水稀釋，製成培養液。現將制備培養基母液所需的各類物質的量列出，供配製時使用。大量元素（母液Ⅰ） mg/LNH4NO333 000KNO338 000CaCl2·2H2O8 800MgSO4·7H2O 7 400KH2PO4 3 400微量元素（母液Ⅱ）KI 166H3BO3 1 240MnSO4·4H2O 4 460ZnSO4·7H2O 1 720Na2MoO4·2H2O 50CuSO4·5H2O 5CoCl2·6H2O 5鐵鹽（母液Ⅲ）FeSO4·7H2O5 560Na2-EDTA·2H2O 7 460有機成分（母液Ⅳ）ⅣA肌醇20 000ⅣB煙酸100鹽酸吡哆醇（維生素B6） 100鹽酸硫胺素（維生素B1） 20甘氨酸 400以上各種營養成分的用量，除了母液Ⅰ為20倍濃縮液外，其餘的均為200倍濃縮液。母液Ⅰ、母液Ⅱ及母液Ⅳ的配製方法是：每種母液中的幾種成分稱量完畢後，分別用少量的蒸餾水徹底溶解，然後再將它們混溶，最後定容到1 L。母液Ⅲ的配製方法是：將稱好的FeSO4·7H2O和Na2-EDTA·2H2O分別放到450 mL蒸餾水中，邊加熱邊不斷攪拌使它們溶解，然後將兩種溶液混合，並將pH調至5.5，最後定容到1 L，保存在棕色玻璃瓶中。各種母液配完後，分別用玻璃瓶貯存，並且貼上標簽，註明母液號、配製倍數、日期等，保存在冰箱的冷藏室中。MS培養基中還需要加入：2，4-二氯苯氧乙酸（2，4-D）、萘乙酸(NAA）、6-苄基嘌呤（6-BA）等植物生長調節物質，並且分別配成母液（0?1 mg/mL）。其配製方法是：分別稱取這3種物質各10 mg，將2，4-D和NAA用少量（1 mL）無水乙醇預溶，將6-BA用少量（1 mL）的物質的量濃度為0.1 mol/L的NaOH溶液溶解，溶解過程需要水浴加熱，最後分別定容至100 mL，即得質量濃度為0.1 mg/mL的母液。配製培養液 用量筒或移液管從各種母液中分別取出所需的用量：母液Ⅰ為50 mL，母液Ⅱ、Ⅲ、ⅣA和ⅣB各5 mL。再取2，4-D 5 mL、NAA 1 mL，與各種母液一起放入燒杯中。

Ⅶ 培養基的母液的化學成分主要是什麼，用量是多少

1、大量元素母液的配製

各成分按照表1培養基濃度含量擴大10倍用天平稱取，用蒸餾水分別溶解，按順序逐步混合。後用蒸餾水定容到 1000ml的容量瓶中，即為10倍的大量元素母液。到入細口瓶，貼好標簽保存於冰箱中。配製培養基時，每配1L培養基取此液100ml。

表1 MS培養基大量元素母液制備

Ⅷ 培養基中母液的配製有哪幾種方法

培養基的配製應遵循一定的方法和程序，如果每次配製都要按著成分表依次稱量，既費時，又增加了多次稱量的誤差。

為了提高配製培養基的工作效率，一般將常用的基本培養基先配製成10倍或100倍液或更高倍數的貯備液或母液（stocksolution）。

母液的配製常常有兩種方法。一是將培養基的每個組分配成單一化合物母液，一是配成幾種不同化合物的混合母液。

前者便於配製不同種類的培養基，後者在大量配製同種培養基時省時、省力。以MS培養基配製為例，說明母液配製過程中應注意的問題。該配方中除了蔗糖和瓊脂外，還包括有19種成分，其中大多數化合物帶有若干水分子，如果是用不同水分含量的同種化合物代替，則須重新計算其正確用量。通常配製四種貯備母液：大量元素（濃縮20倍）、微量元素（濃縮200倍）、鐵鹽（濃縮200倍）、除蔗糖外的有機物質（濃縮200倍）。在制備這幾種母液時，要避免發生沉澱，通常把每種試劑單獨溶解後（尤其是CaClsubscript2subscript，易與SOsuperscript2-、POsuperscript3-形成硫酸鈣或磷酸鈣的不溶物），再與別的也已經完全溶解的葯品混合，混合已溶解的各種無機鹽時還應注意先後順序。Fesuperscript2+superscript易與某些陰離子形成沉澱而失效，故鐵元素需單獨配製成螯合鐵母液。

各種生長調節物質的母液應分別配製，應先把它們溶解在很少量的適當溶劑中，可加熱助溶，然後再加水定容。母液的濃度一般宜配製成1mmolL或10mmolL。

Ⅸ 暑假我想使用植物組織培養技術，你知道它詳細的操作過程嗎

植物組織培養的步驟
一、培養基配製
現以MS培養基為例介紹配置培養基的主要過程。
1、配製幾種母液
（1）配製MS大量元素母液 一般將大量元素分別配製成100倍的母液，使用時再分別稀釋100倍。 分別稱取 NH4NO3 165g KH2PO4 17g KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g MgSO4·7H2O 37g 各自配成1L的母液。倒入1L試劑瓶中，存放於冰箱中。 （2）配製MS微量元素母液 一般將微量元素配製成100倍母液。 依次稱取 KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025g H3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025g MnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025g ZnSO4·7H2O 0.86g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放於冰箱中。 CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由於稱取量很小，如果天平精確度沒有達到萬分之一，可先配成調整液。 分別稱取 CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g 各自配成100ml的調整液，然後取5ml就還有0.0025g的量。
（3）配製MS有機母液 一般配製成100倍MS有機母液。 依次稱取 肌醇 10g 鹽酸硫胺素（VB1） 0.01g 煙酸 0.05g 甘氨酸 0.2g 鹽酸吡哆醇（VB6） 0.05g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放於冰箱中。
（4）配製MS鐵鹽母液 一般配製成100倍MS鐵鹽母液。 依次稱取 EDTA二鈉 3.73g FeSO4·7H2O 2.78g 配成1L母液，倒入1L試劑瓶中，存放於冰箱中。 所以MS母液有5種大量元素母液，加上MS微量元素母液、MS有機母液和MS鐵鹽母液，共8種母液。 激素母液的配製 各種生長素和細胞分裂素要單獨配製，不能混合在一起，生長素類一般要先用少量95%的酒精或1當量的NaOH溶解，細胞分裂素一般要先用1當量的鹽酸溶解，然後再加蒸餾水定容。一般取100mg配成100ml母液。
2、配製培養基 以配置1L MS培養基為例，按順序進行如下操作：
（1）先在燒杯中放入一些蒸餾水。 （2）分別取上面八種母液10ml倒入。 （3）一般稱取30g蔗糖倒入，攪拌溶解。 （4）加蒸餾水用量筒定溶至1L。 （5）按設計好的方案添加各種激素，由於激素的用量很小，而且激素對組培植物的生長至關重要。所以有條件的話最好用微量可調移液器吸取，減少誤差。 （6）用精密試紙或酸度計調整PH至5.7-5.8。（有條件的話使用酸度計，比較精確） 可配1當量的HCL和1當量的NaOH用來調溶液PH值。 1當量HCL配製：用量筒量取8.3ml配成100ml溶液。 1當量NaOH配製：稱取NaOH 4g 配成100ml溶液。 （7）稱取5g左右瓊脂粉（質量好的瓊脂粉),倒入上面配好的溶液中，放在電爐上加熱至沸騰，直到瓊脂粉熔化。 （8）稍微冷卻後，分裝入培養容器中。無蓋的培養容器要用封口膜或牛皮紙封口，用橡皮筋或繩子扎緊。 （9）放入消毒滅菌鍋滅菌，滅菌20分鍾左右。 （10）滅菌後從滅菌鍋中取出培養基，平放在實驗台上令其冷卻凝固。
二、滅菌
滅菌是組織培養重要的工作之一。
1、培養基用濕熱滅菌 培養基在制備後的24小時內完成滅菌工序。高壓滅菌的原理是：在密閉的蒸鍋內，其中的蒸汽不能外溢，壓力不斷上升，使水的沸點不斷提高，從而鍋內溫度也隨之增加。在0.1MPa的壓力下，鍋內溫度達121℃。在此蒸汽溫度下，可以很快殺死各種細菌及其高度耐熱的芽孢。 注意完全排除鍋內空氣，使鍋內全部是水蒸氣，滅菌才能徹底。高壓滅菌放氣有幾種不同的做法，但目的都是要排凈空氣，使鍋內均勻升溫，保證滅菌徹底。常用方法是：關閉放氣閥，通電後，待壓力上升到0.05MPa時，打開放氣閥，放出空氣，待壓力表指針歸零後，再關閉放氣閥。 關閥再通電後，壓力表上升達到0.1MPa時，開始計時，維持壓力0.1-0.15MPa，20分鍾。 按容器大小不同，保壓時間有所不同，見表。該表所列數字是徹底滅菌很保險的數字，如果容器體積較大，但是放置的數量很少，也可以減少時間。
三、接種
無菌操作可按以下步驟進行： （1）在接種4小時前用甲醛熏蒸接種室，並打開其內紫外線燈進行殺菌； （2）在接種前20分鍾，打開超凈工作台的風機以及台上的紫外線燈； （3）接種員先洗凈雙手，在緩沖間換好專用實驗服，並換穿拖鞋等； （4）上工作台後，用酒精棉球搽拭雙手，特別是指甲處。然後搽拭工作檯面； （5）先用酒精棉球搽拭接種工具，再將鑷子和剪刀從頭至尾過火一遍，然後反復過火尖端處，對培養皿要過火烤乾； （6）接種時，接種員雙手不能離開工作台，不能說話、走動和咳嗽等； （7）接種完畢後要清理干凈工作台，可用紫外線燈滅菌30分鍾，若連續接種，每5天要大強度滅菌一次。 接種是將已消毒好的根、莖、葉等離體器官，經切割或剪裁成小段或小塊，放入培養基的過程。現將接種前後的程序連貫地介紹。
無菌接種步驟： （1）將初步洗滌及切割的材料放入燒杯，帶入超凈台上，用消毒劑滅菌，再用無菌水沖洗，最後瀝去水分，取出放置在滅過菌的紗布上或濾紙上。 （2）材料吸干後，一手拿鑷子、一手拿剪刀或解剖刀，對材料進行適當的切割。如葉片切成0.5cm平方的小塊；莖切成含有一個節的小段。微莖尖要剝成只含1-2片幼葉的莖尖大小等。在接種過程中要經常灼燒接種器械，防止交叉污染。 （3）用灼燒消毒過的器械將切割好的外植體插植或放置到培養基上。具體操作過程（以試管為例）是：先解開包口紙，將試管幾乎水平拿著，使試管口靠近酒精燈火焰，並將管口在火焰上方轉動，使管口裡外灼燒數秒鍾。若用棉塞蓋口，可先在管口外面灼燒，去掉棉塞，再燒管口裡面。然後用鑷子夾取一塊切好的外植體送入試管內，輕輕插入培養基上。若是葉片直接附在培養基上，以放1-3塊為宜。至於材料放置方法除莖尖、莖段要正放（尖端向上）外，其他尚無統一要求。接種完後，將管口在火焰上再灼燒數秒種。並用棉塞，塞好後，包上包口紙，包口紙裡面也要過火。
四、培養
1、培養方法 （1）固體培養法 即用瓊脂固化培養基來培養植物材料的方法。是現在最常用的方法。雖然該方法設備簡單，易行，但養分分布不均，生長速度不均衡，並常有褐化中毒現象發生。 （2）液體培養法 即用不加固化劑的液體培養基培養植物材料的方法。由於液體中氧氣含量較少，所以通常需要通過攪動或振動培養液的方法以確保氧氣的供給，採用往復式搖床或旋轉式搖床進行培養，其速度一般為50-100r/min，這種定期浸沒的方法，既能使培養基均一，又能保證氧氣的供給。
2、培養步驟 （1）初代培養 初代培養旨在獲得無菌材料和無性繁殖系。即接種某些外植體後，最初的幾代培養。初代培養時，常用誘導或分化培養基，即培養基中含有較多的細胞分裂素和少量的生長素。初代培養建立的無性繁殖系包括：莖梢、芽叢、胚狀體和原球莖等。
五、馴化移栽
試管苗移栽是組織培養過程的重要環節，這個工作環節做不好，就會造成前功盡棄。為了做好試管苗的移栽，應該選擇合適的基質，並配合以相應的管理措施，才能確保整個組織培養工作的順利完成。 1、移栽用基質和容器 （1）河砂 （2）草炭土 （3）腐殖土 （4）容器 2、移栽前的准備 移栽前可將培養物不開口移到自然光照下鍛煉2-3天，讓試管苗接受強光的照射，使其長得壯實起來，然後再開口練苗1-2天，經受較低濕度的處理，以適應將來自然濕度的條件。 3、移栽和幼苗的管理 從試管中取出發根的小苗，用自來水洗掉根部粘著的培養基，要全部除去，以防殘留培養基滋生雜菌。但要輕輕除去，應避免造成傷根。移植時用一個筷子粗的竹簽在基質中插一小孔，然後將小苗插入，注意幼苗較嫩，防止弄傷，栽後把苗周圍基質壓實，栽前基質要澆透水。栽後輕澆薄水。再將苗移入高濕度的環境中。保證空氣濕度達90%以上。 （1）保持小苗的水分供需平衡。在移栽後5-7天內，應給予較高的空氣濕度條件，使葉面的水分蒸發減少，盡量接近培養瓶的條件，讓小苗始終保持挺拔的狀態。保持小苗水分供需平衡首先營養缽的培養基質要澆透水，所放置的床面也要澆濕，然後搭設小拱棚，以減少水分的餓蒸發，並且初期要常噴霧處理，保持拱棚薄膜上有水珠出現。當5-7天後，發現小苗有生長趨勢，可逐漸降低濕度，減少噴水次數，將拱棚兩端打開通風，使小苗適應濕度較小的條件。約15天以後揭去拱棚的薄膜，並給予水分控制，逐漸減少澆水，促進小苗長得粗壯。 （2）防止菌類滋生。由於試管苗原來的環境是無菌的，移出來以後難以保持完全無菌，因此，應盡量不使菌類大量滋生，以利成活。所以應對基質進行高壓滅菌或鴻烤滅菌。可以適當使用一定濃度的殺菌劑以便有效的保護幼苗，如多菌靈、托布津，濃度800-1000倍，噴葯宜7-10天一次。在移苗時盡量少傷苗，傷口過多，根損傷過多，都是造成死苗的原因。噴水時可加入0.1%的尿素，或用1/2MS大量元素的水溶液作追肥，可加快苗的生長與成活。 （3）一定的溫、光條件。 試管苗移栽以後要保持一定的溫光條件，適宜的生根溫度是18-20℃，冬春季地溫較低時，可用電熱線來加溫。溫度過低會使幼苗生長遲緩，或不易成活。溫度過高會使水分蒸發，從而使水分平衡受到破壞，並會促使菌類滋生。 另外在光照管理的初期可用較弱的光照，如在小拱棚上加蓋遮陽網或報紙等，以防陽光灼傷小苗和增加水分的蒸發。當小植株有了新的生長時，逐漸加強光照，後期可直接利用自然光照。促進光合產物的積累，增強抗性，促其成活。 （4）保持基質適當的通氣性。 要選擇適當的顆粒狀基質，保證良好的通氣作用。在管理過程中不要澆水過多，過多的水應迅速瀝除，以利根系呼吸。 綜上所述，試管苗在移栽的過程中，只要把水分平衡、適宜的介質、控制雜菌和適宜的光、溫條件控制好，試管苗是很容易移栽的。