凝膠電泳用的什麼儀器

❶ 聚丙烯醯氨凝膠電泳的實驗材料

一．設備
進行凝膠電泳的裝置見圖版4。
1）直流電源如果一次進行電泳的管數在20管以內可以用最大電流300毫安的整流器（硅或硒整流器），調壓范圍0—300伏。
2）電泳裝置包括二個緩沖液槽和電泳 管。液槽可以用玻璃或塑料製成，在底部鑽孔。插入電泳管，用有孔橡皮塞固定。電泳管選用孔徑均勻一致的玻璃管切制。長10厘米，內徑 ^5毫米。脫色用玻璃管長10厘米，內徑8毫米。底部稍拉尖，用半透膜及橡皮圈套住底部。
3）凝膠管架灌裝凝膠管時使管保持垂直位置，用有機玻璃製成。
二．操作方法
1）凝膠管的制備將電泳玻管用小橡皮塞塞住底部，然後灌入新配的凝膠溶液（方法見下文）。每管加至液體高度為7．5厘米。為了保證凝膠表面平整可用注射器通過細針頭小心地加一層（高約1厘米）蒸餾水於表面上，勿使與凝膠液混合，室溫放置。如果條件合適溶液於 30—60分鍾內聚合而成凝膠。凝膠溶液的配製方法如下：溶液甲：丙烯醯胺（氯仿重結晶）25克，雙體（甲醇重結晶）1克，加水配成100毫升溶液。必要時用三羥甲基氨基甲烷調pH至7．0。溶液乙：二甲氨基丙腈l毫升，三羥甲基氨基甲烷0．85克（也可用0．625克氨三乙醇或氨乙醇）加水至100毫升。溶液丙：K3Fe(cN)6分析純0．075克，加水至100毫升新配。用作阻聚劑以延緩凝聚時間。使操作方便，如凝聚時間已足夠長可以用蒸餾水代替。溶液丁：過硫酸銨（二級）2．8克加水至 100毫升新配。必要時用氨水調pH至7．0 c， 溶液甲及乙配後可在冰箱中保存數月。溶液丙及丁用時新配。臨用前將溶液甲、乙、丙、丁等量混合。
2）准備把已灌裝凝膠的玻管通過有孔椽皮塞安裝在上面液槽的底孔中，在上下兩槽內分別注入緩沖液。裝上後電泳管下端應浸沒在下槽的緩沖液中，管下端勿留氣泡。血清電泳可以用巴比妥緩沖液pH一8．6，離子強度0．05（配法：巴比妥鈉10．3克，二乙基巴比土酸1．84克，加水至1升，溫熱使溶。加硫柳汞0．1克防霉）。
3）加樣在資料介紹的方法中，一般還在了這一步。在血清樣品中加入少量蔗糖以增加密度，用血紅蛋白吸管直接小心地加在凝膠表面上，加樣量一般為7微升血清。如果在樣品中混入少量溴酚蘭指示劑就可以在電泳過程中觀察前沿移動的情況。
4）電泳在二液槽中安放鉑金絲電極；正極在下，負極在上。接通電源進行電泳，電場強度10伏/厘米左右，視室溫高低而定。室溫較高時宜用較低的電壓以免發熱過度影響分離。蛋白質向正極移動。侍染料前沿移動至管底近處，停止電流。電泳時間為1一2小時。電泳完畢取下凝膠管，用細長針頭沿管壁注蒸餾水，使凝膠與管壁剝開。然後用橡皮球壓出凝膠條。
5）染色及脫色電泳後的凝膠條在1%氨基黑10B在7%醋酸溶液中固定並染色1小時以上。染色後的凝膠條用7%醋酸洗滌數次。置於脫色玻管中，在同一電泳裝置中電解脫色。此時改用7%醋酸充裝在液槽中。通電後過剩凝膠之上再加一層大孔凝膠，樣品聚合在最後的另一層凝膠中（圖2）。在我們的試驗中省略的染料泳向正極。脫色時電場強度25伏/厘米，電流10—1 5毫安/管。3—4小時脫色完畢。增高電壓可以加速脫色。有色的醋酸溶液通過盛有活性炭的漏斗過濾，即可除去染料，重新使用。
6）保存與記錄脫色後的凝膠可以裝在盛有7%醋酸的有塞試管中保存數年。也可以自然乾燥後保存，在需要觀察時再浸在7%醋酸中溶脹成原來形狀。記錄可以用照相攝影。也可以用光密度計進行捕記。光密度計的分辨力決定於其狹縫寬窄及光電管放大倍數。
三、實驗結果
1．電泳條件的選擇
為了選擇血清蛋白電泳較合適的條件，我們分別對單體濃度、雙體濃度、配製凝膠時所用不同正離子、各種電壓、二甲氨基丙腈的濃度、過硫酸銨的濃度等條件進行了試驗。根據以上試驗結果，我們在分離血清蛋白時選用的條件是：單體濃度6.25-6.5%，雙體占總丙烯醯胺量的4—5%，正離子採用三羥甲基氨基甲烷，二甲氨基丙腈及過硫酸銨濃度分別為0.25%及0.7%。電泳電壓以7—10伏/厘米較為合適。但電泳時間較長，約2—3小時，室溫低時可以電壓稍高。如果室溫較高則可以在冰箱中進行電泳。
2．人血清及其酒精分劃部分的凝膠電泳
採用上述條件我們進行了正常人血清的凝膠電泳。一般可以分成15—20條區帶。我們也根據RaFmand介紹的兩向電泳方法比較了紙電泳和凝膠電泳各區帶的相對關系。紙電泳上的a：區帶在凝膠電泳中可被分離成10條以上區帶。但紙電泳中d，區帶的一部分則與凝膠電泳中自蛋白區帶相重合。二種電泳方法所得的圖譜見圖版9。在正常人血清中後白蛋白（PA）、轉鐵蛋白(Tr）和觸珠蛋白（HP）均有不同的型， 一例骨髓瘤病人血清的和凝膠電泳自由電泳圖譜的比較見圖版11、12。我們也比較了酒精分劃人血漿各部分的紙電泳和凝膠電泳圖譜，結果見圖版13。從圖中可見在紙上電泳檢定時看來較純晦白蛋白和丙種球蛋白部分，在凝膠電泳中可見明顯的其他蛋白區帶。
3．放射病狗血清蛋白電泳的觀察 放射病動物血清蛋白的改變可以在紙電泳中觀察到。一般認為狗在照射後吻球蛋白有增高。用凝膠電泳觀察可以得到更深入的資 料。正常狗血清的凝膠電泳圖譜大致與人相 似。狗受致死量照射後第九天有明 顯變化，至極期時則可以觀察到鴨、Tr、融及 sp等區帶有明顯增高。我們用胎3—10型光 譜儀用光密度計將電泳圖譜進行了掃描，所得 結果見圖3，圖版14。由於儀器的限制光縫 最小隻能達到0．5毫米，從而影響了其分辨力。但與正常血清對比可以見到其改變的情況，這 遠比紙電泳中所見更為明顯。我們認為如果聯 系臨床表現對變化的本質進行一些研究，將有 助於了解放射病極期來到前後體內蛋白質代謝的一些情況。
4．在分離正常人尿DNase時的凝膠電泳 觀察 用葡聚糖凝膠分離人尿中DNase時可以除去大部分其他蛋白質和雜質。但分離所得的製品用凝膠電泳觀察還可以見到五條以上的蛋白質區帶（見圖版14）。將凝膠條在未染色前置於含大分子DNA的瓊脂平板上，在37c』溫箱中保溫2—3小時，再用5%三氯醋酸加至如此處理過的瓊脂板上，可以看到乳白色本底上出現被酶水解後的透明斑點。將凝膠條用氨黑染色後顯示其蛋白區帶的位置。二者比較就可以確定具有酶活性的成分的相應電泳位置。我們的試驗中觀察到人尿DNase在凝膠電泳中至少被分離成二條以上有酶活性的區帶。說明有同功酶的可能。應用這一方法可以較深人地觀察體液中酶的情況。同時也說明可以用凝膠電泳來指示生物制劑制備過程中純化的情況。
四、結 論
本文介紹了聚丙烯醯胺凝膠電泳的一些初步實驗條件和實驗結果，並與紙電泳、自由電泳等進行了對比。從結果中可以看到聚丙烯醯胺凝膠電泳的分辨力較強，重演性良好。它在臨床生化分析及生物活性物質的分離、制備中和純度鑒定中具有較廣泛應用的可能性。

❷ 做電泳實驗必須要知道的基礎知識

＊樣品制備

樣品必須完全溶解於上樣緩沖液，否則不能在凝膠中移動。樣品太濃可能產生假相。

樣品緩沖液包含鹽類（維持樣品）、甘油（增加重量從而使樣品下沉至點樣孔）、以及示蹤染料（以便監測電泳進程）。

樣品緩沖液可以分裝成小部分凍存。

緩沖液加到凝膠上之後才能點樣。

樣品緩沖液中的示蹤染料可以指示什麼時候終止電泳。兩種最常用的染料是漠酚藍(BPB) 與二甲基苯青FF 。

＊標準分子質量

標準分子質量應同時電泳，用來檢測電泳進展以及分析結果。

使用相適應的標準分子質量。

膠連同分子質量標准物一起拍照。標上各條帶的大小。

標準分子質量有帶標記的與不帶標記的兩種。標記可以是熒光、發光體或者放射性元素。如果手邊沒有帶標記的標准物，可以將染色後的膠與事後標記的印跡相比較。

在每一塊膠的同一泳道點上標准物。把標准物加在第一個泳道，就能知道膠的方向。

點上正對照與負對照。

＊樣式

瓊脂糖凝膠一般以水平方向進行電泳，而聚丙烯醯胺凝膠則是以垂直方向進行電泳。潛水型膠是一種水平方向膠，凝膠被浸淹在電泳槽的底部。

凝膠可以製成多種大小。測序膠必須製成大膠，但是對於大多篩選與轉移用膠，甚至包括雙向凝膠來說，只要不是把分子量相近的條帶區分割，小型膠就可以了。

毛細管電泳利用開口狹小的毛細管來進行DNA 、蛋白質和其他小分子的自動高效分離。分離是與檢測分析相連，就像色譜儀器一樣。只有專門實驗室才有毛細管電泳設備。

＊凝膠

聚丙烯醯胺VS

瓊脂糖。盡管凝膠電泳可以在濾紙、醋酸纖維素、澱粉或者其他基質上進行，大多數研究者還是只採用聚丙烯醯胺或瓊脂糖凝膠。兩種都是多孔性膠，像分子篩樣起作用（聚丙烯醯胺或者瓊脂糖的百分比越高孔越小）。理論上，任何一種都可以用來分離DNA

、RNA 或者蛋白質。但是，聚丙烯醯胺在低百分比濃度時很軟，難以用手操作。一般採用高百分比濃度，用以分析蛋白質和小核苷酸。

低百分比瓊脂糖凝膠相對較硬，易於操作，用來分離目的分子，如DNA和RNA或者巨大的蛋白質和蛋白質復體。

膠的濃度必須與片斷大小相適應。

每次切去膠的同一小角。這樣，萬一膠掉落、翻轉或在轉移過程中放置凝膠，都能給定位做參考。

＊緩沖液

大多數電泳緩沖液配成高濃度母液，在電泳前稀釋。

每一種緩沖液在某一電流時會有特定的電壓。要認識每一種緩沖液的特性，這樣，出錯時，就馬上可以注意到。

＊電源

電源輸出有幾種模式：穩壓(mV) 、穩流（安培，或者簡稱安）以及穩功率（瓦特，瓦） 。許多型號允許設定程序，在各種模式之間自動轉換。這樣可以使用最佳的電壓（ 在電泳過程中可能發生變化）同時不超出容量。

不是所有的電源輸出裝置都相同，所以不能簡單地將電泳裝置接到任意裝置上。要清楚你需要什麼電流或者電壓，然後找出需要的裝置。

大多數實驗室都有不止一個電源裝置用於測序膠（要求高電壓）、電泳轉移（要求高電流）以及用於瓊脂糖和聚丙烯醯胺電泳（使用大范圍的電壓）的裝置。很少有電源裝置能同時滿足所有的要求。

變性蛋白膠與DNA和RNA膠中的樣品會從負極（陰極）移到正極（陽極） 。用紅色導線接正極（＋），黑色導線接負極（一）。可以用同一個電源輸出裝置同時進行幾塊膠的電泳，但是沒問過其他人前不要這樣做，因為電泳條件會發生變化。

設置鬧鍾提醒自己察看膠。特別是當你要察看低分子質量的分子時，樣品很容易跑出膠進入緩沖液中。

接觸任何東西前，確信電泳裝置必須處於斷電狀態。如果電源沒被切斷，不要進行任何操作！

電流效應

         電流（mA）效應

交流電直流電

≤15沒有感覺

1~8 電擊感覺， 不疼

8~15 疼痛性電擊，個別人可以擺脫緊握

15~2075肌肉控制喪失，不能擺脫緊握

20~50 肌肉收縮，呼吸困難

50~100300~500可能會出現心室纖維顫動

100~200 心室纖維顫動

≥200 嚴重灼傷，肌肉收縮嚴重以致心跳停止

＊固定

凝膠是否需要固定取決於用途。需要染色的膠一般需要固定，而用於轉移的膠則不需要固定。

＊乾燥

通過出去膠上的水，膠基質變薄。乾燥之後的膠在放射自顯影後條帶更清晰。

在凝膠乾燥儀上乾燥一塊膠不需1小時。凝膠乾燥儀可以加熱，從而加快乾燥過程。

＊染色

DNA與RNA的染色可以通過在電泳前把染料加到樣品中完成，也可以在事後染色。

蛋白質膠在電泳後染色。

＊記錄

凝膠經溴化乙錠染色後的Polaroid照片與蛋白質凝膠的35 mm照片是最常用的記錄方式。

數字記錄與分析系統最常使用，所有數據可以直接用來演示。

各種轉移的記錄方式取決於體系與實驗。例如，放射自顯影與化學發光結果可以記錄在X射線膠片上，而信號可用光密度計定量。

＊確定分子質量

蛋白質的分子質量可用SDS-PAGE確定，而DNA與RNA的分子質量可以由瓊脂糖凝膠電泳來確定。對某一分子而言，其分子質量的對數與其Rf（相對遷移距離）存在線性關系。以標准物的遷移距離對其分子質量的對數作圖，得到標准曲線，而樣品的Rf 值一也就是分子質量一可以由圖外推得到。

1.制膠，膠的濃度應最適宜分離分子質量相近的分子。同時電泳分子質量標准物，其范圍涵蓋有目的分子的大致大小。

2.跑膠，防止染料前沿跑出膠的邊際。

3.膠染色，拍照。如果樣品是放射性標記的，你可以使用放射性標記的標准物或者把膠與放射自顯影膠片相比較。4.測定從樣品孔到每一標准條帶的距離。計算每個數值的對數，畫到常規圖紙的Y 軸上。X 軸上是遷移的距離（以厘米計最方便）。對大多數標准物條帶應該得到一條盲線。

5.把樣品遷移距離畫到圖上。外推標准曲線，確定分子質量。

❸ 電泳槽和電泳儀的區別

電泳槽是凝膠電泳系統的核心部分，其系統的迅猛發展主要也是體現在電泳槽上。根據電泳的原理，凝膠都是放在兩個緩沖腔之間，電場通過凝膠連接兩個緩沖腔。緩沖液和凝膠之問的接觸可以是直接的液體接觸，也可以間接通過凝膠條或濾紙條。管狀凝膠電泳和垂直板狀電泳大多採取直接液體接觸方式。這種方式可以有效地使用電場，但在裝置設計上有一些困難，如液體泄漏，電安全和操作麻煩等問題。水平板狀電泳槽大多通過間接方式，用濾紙橋搭接。
電泳槽和電泳儀合用才能進行電泳實驗。電泳槽是用來制備凝膠，進行電泳的主要場所。電泳儀主要是用來提供電流，產生電場力帶動分子運動的。電泳槽是裝（塗料）容器，電泳的工作儀器。電泳儀是提供（電泳）電壓的設備。

❹ 跑電泳除了凝膠成像儀還有什麼可以拍照的

BIO－RAD凝膠電泳成像系統的操作方法

1. 接通電源和照相機電源

2. 2.打開開關，預熱30分鍾

3. 3.打開，文件菜單中gel-doc.xr

4. 4.按live/focus,30s後按autoexpose or manualexpose

5. 5.調iris,zoom ,focus調節圖像清晰度，之後按freeze拍照，保存。

BIO-RAD 凝膠成像系統 Universal Hood Ⅱ

儀器性能：

拍攝對象：核酸瓊脂糖凝膠電泳

X光膠片

功能：獲取並處理圖像

測定圖像光密度

操作步驟：

1. 開啟成像系統，電腦電源

2. 打開Quality One，調整光源所示圖像

3. 觀察並調整曝光時間，獲得圖像並保存

4. 調整圖像，並對圖像進行光密度分析

5. 關閉所有電源

❺ 毛細管電泳法的特點;優點

1、電泳柱效更高，可達105m-1～106m-1，分離速度更快，在幾十秒至幾十分鍾內即可完成一個試樣的分析。

2、溶劑和試樣消耗極少，試樣用量僅為納升級。

3、沒有高壓泵輸液，因此儀器成本更低。

4、通過改變操作模式和緩沖溶液的成分，毛細管電泳有很大的選擇性，可以對性質不同的各種分離對象進行有效的分離。

毛細管電泳法使用注意事項

對於實驗結果的可靠性和重現性，毛細管的沖洗起到了至關重要的作用，每一次沖洗都必須認真地完成，沖洗時間不允許縮短或者不沖洗。

將實驗做完以後一定要使用水對毛細管進行沖洗，不然毛細管可能會被堵塞,使得實驗結果受到嚴重地影響，希望引起足夠的重視。

在對毛細管進行沖洗的時候，不要將電壓加在毛細管上，講義上給定的工作電壓不允許更改，也不建議對進樣時間加以改變。

以上內容參考網路-毛細管電泳法

❻ 分子生物學檢驗技術常用的儀器有哪些以及如何使用

高速離心機（10000r
/min以上），PCR儀，凝膠電泳系統，其他實驗室常規儀器。
使用的話，離心機和電泳儀上面的按鈕很少，看到就會了。PCR現在多是觸屏的可視化設置，知道PCR原理的話，看到儀器也會用的。
如果樓主是要應付考試，可以去圖書館找分子生物學實驗技術指南之類的書，或者分子克隆，這個是分子生物學最權威的操作手冊。
至於分子生物學檢驗的話，就要看你是做哪方面的檢驗，但是這些基本的儀器是必須的，只要和分子生物學有關。現在應用比較多的可能是生物晶元，這個是生物技術公司的產品，有說明書的。

❼ 核酸電泳方法

帶電荷的物質在電場中的趨向運動稱為電泳。核酸電泳是進行核酸研究的重要手段，是核酸探針、核酸擴增和序列分析等技術所不可或缺的組成部分。核酸電泳通常在瓊脂糖凝膠或聚丙烯醯胺凝膠中進行，濃度不同的瓊脂糖和聚丙烯醯胺可形成分子篩網孔大小不同的凝膠，可用於分離不同分子量的核酸片段。

中文名
核酸電泳
外文名
Nucleic Acid Electrophoresis
學科
分子生物學
概念簡介

凝膠電泳操作簡便、快速，可以分辨用其它方法(如密度梯度離心)所無法分離的核酸片段，是分離、鑒定和純化核酸的一種常用方法。

分類
瓊脂糖凝膠電泳

1.原理瓊脂糖是從海藻中提取出來的一種線狀高聚物。將瓊脂糖在所需緩沖液中加熱熔化成清澈、透明的溶膠，然後倒入膠模中，凝固後將形成一種固體基質，其密度取決於瓊脂糖的濃度。

將凝膠置電場中，在中性pH值下帶電荷的核酸通過凝膠網孔向陽極遷移，遷移速率受到核酸的分子大小、構象、瓊脂糖濃度、所加電壓、電場、電泳緩沖液、嵌入染料的量等因素影響。在不同條件下電泳適當時間後，大小、構象不同的核酸片段將處在凝膠不同位置上，從而達到分離的目的。瓊脂糖凝膠的分離范圍較廣，用各種濃度的瓊脂糖凝膠可分離長度為200bp至50kb的DNA。

2.瓊脂糖凝膠電泳的儀器及試劑儀器設備應包括水平凝膠電泳槽及其配套電泳梳、穩壓電泳儀、微波爐或普通電爐。同時配備紫外線檢測儀和照相系統。

試劑包括瓊脂糖、電泳緩沖液、溴化乙錠溶液、凝膠加樣緩沖液。

電泳緩沖液常用TBE(1 000ml中含5.4g Tris，2.75g硼酸，2ml 0.5 mol/L EDTA，pH8.0)。

溴化乙錠(ethidium bromide，EB)是一種熒光染料，它可以嵌入核酸雙鏈的配對鹼基之間，在電泳過程中隨核酸片段遷移，將凝膠置紫外光下，插入核酸鏈中的EB在紫外線激發下產生紅色熒光，可清楚顯示各核酸片段的遷移。EB見光易分解，應存棕色試劑瓶中於4℃下保存。由於 EB是一種強的誘變劑並有中度毒性，使用時必須戴手套操作

❽ 雙向聚丙基凝膠電泳能分離氨基酸嗎如何分離氨基酸，和鑒別氨基酸的含量用到哪些儀器

雙向PAGE分不了，因為第二向的SDS-PAGE分離孔徑根本不能達到分離氨基酸的要求。

分離氨基酸和鑒別的方法可以用到，紙電泳，液相， 全自動氨基酸分析儀。我知道的就這幾個，紙電泳用到的設備最簡單便宜，其他的你看名字，你懂的。希望能夠幫助你。
還有一點補充，如果是特殊氨基酸的話可以根據其本身性質分析，但那些都是特例了，作為分析化學的一種手段，不是我們做生化試驗的常用套路了。

❾ 電泳這么做生物工程方面的電泳有沒有具體步驟謝謝

電泳（Electrophoresis）是指帶電荷的粒子或分子在電場中移動的現象稱為電泳。大分子的蛋白質，多肽，病毒粒子，甚至細胞或小分子的氨基酸，核苷等在電場中都可作定向泳動.1937年Tis

elius成功地研製了界面電泳儀進行血清蛋白電泳，它是在一U型管的自由溶液中進行的，電泳後用光學系統使各種蛋白所形成折光率差別成為曲線圖象，將血清蛋白分為白蛋白，α1-球蛋白，α2-球蛋白，β-球蛋白和γ-球蛋白五種，隨後，Wielamd 和Kanig 等於1948年採用濾紙條做載體，成功地進行了紙上電泳。從那時起，電泳技術逐漸被人們所接受並予以重視，繼而發展以濾紙，各種纖維素粉，澱粉凝膠，瓊脂和瓊脂糖凝膠，醋酸纖維素薄膜，聚丙烯醯胺凝膠等為載體，結合增染試劑如銀氨染色，考馬斯亮藍等大大提高和促進生物樣品著色與分辨能力，此外電泳分離和免疫反應相結合，使解析度不斷朝著微量和超微量（1ng～0.001ng）水平發展，從而使電泳技術獲得迅速推廣和應用。
目前所採用的電泳方法，大致可分為3類：顯微電泳，自由界面電泳和區帶電泳.區帶電泳應用廣泛，區帶電泳可分為以下幾種類型：
按支持物的物理性狀不同，區帶電泳可分為：
（1）濾紙為支持物的紙電泳;
（2）粉末電泳：如纖維素粉，澱粉，玻璃粉電泳；
（3）凝膠電泳：如瓊脂，瓊脂糖，硅膠，澱粉膠，聚丙烯醯胺凝膠電泳；
（4）緣線電泳：如尼龍絲，人造絲電泳
2．按支持物的裝置形式不同，區帶電泳可分為：
（1）平板式電泳：支持物水平放置，是最常用的電泳方式；
（2）垂直板電泳：聚丙烯醯胺凝膠可做成垂直板式電泳。
（3）柱狀（管狀）電泳：聚丙烯醯胺凝膠可灌入適當的電泳管中做成管狀電泳.
3．按pH的連續性不同，區帶電泳可分為：
（1）連續pH電泳：如紙電泳，醋酸纖維素薄膜電泳;
（2）非連續pH電泳：如聚丙烯醯胺凝膠盤狀電泳；
電泳所需的儀器

電泳所需的儀器有：電泳槽和電源。
1．電泳槽
電泳槽是電泳系統的核心部分，根據電泳的原理，電泳支持物都是放在兩個緩沖液之間，電場通過電泳支持物連接兩個緩沖液，不同電泳採用不同的電泳槽.常用的電泳槽有：
（1）圓盤電泳槽：有上，下兩個電泳槽和帶有鉑金電極的蓋。上槽中具有若干孔，孔不用時，用硅橡皮塞塞住.要用的孔配以可插電泳管（玻璃管）的硅橡皮塞。電泳管的內徑早期為5～7mm，為保證冷卻和微量化，現在則越來越細.
（2）垂直板電泳槽：垂直板電泳槽的基本原理和結構與圓盤電泳槽基本相同。差別只在於制膠和電泳不在電泳管中，而是在塊垂直放置的平行玻璃板中間.
（3）水平電泳槽：水平電泳槽的形狀各異，但結構大致相同。一般包括電泳槽基座，冷卻板和電極.
電源
要使荷電的生物大分子在電場中泳動，必須加電場，且電泳的解析度和電泳速度與電泳時的電參數密切相關。不同的電泳技術需要不同的電壓，電流和功率范圍，所以選擇電源主要根據電泳技術的需要.如聚丙烯醯胺凝膠電泳和SDS電泳需要200～600V電壓。
http://ke..com/view/25110.htm?fr=aladdin