『壹』 逆轉錄PCR的實驗步驟用到哪些試劑和儀器
一、實驗器具與材料:
1、移液器:1ml、200μl、20μl、10μl、2μl
2、吸頭:1ml、200μl、20μl
3、勻漿管:5ml
4、吸頭台:放置1ml吸頭的一個,放置20μl吸頭的一個
5、EP管:1.5ml、0.2ml、100μl
6、試劑瓶:2個60ml的棕色試劑瓶(廣口,帶蓋);1個125ml的白色試劑瓶(放無水乙醇)
7、量筒:50ml、250ml、500ml
8、容量瓶:250ml、500ml、1000ml
9、試管架:5ml、1.5ml、20μl
10、鹽水瓶:250ml、500ml各2個備用,一個裝無水乙醇,另一個裝DEPC水
11、鋁制飯盒:4個
12、塑料小飯盒:1個
13、大瓷缸:2個
14、錫泊紙:一卷
15、卷紙:2卷
16、三角燒瓶:帶蓋,稍大
二、實驗器具的處理與准備
1、塑料製品:(包括槍頭、EP管、勻漿管等)
先將DEPC水從容量瓶中倒入瓷缸中,將塑料製品逐個浸泡其中,其中小槍頭需要吸管打入DEPC水,過夜,然後高壓,再烤乾備用,實驗前將槍頭等放入吸頭台,再高壓一次(EP管)
2、玻璃製品:泡酸過夜,沖洗干凈,蒙錫紙烤乾備用(DEPC水泡)(洗凈後先泡1‰DEPC過夜,再烤乾)
3、勻漿器:(包括剪刀、鑷子)先洗凈後,再高壓(不需要泡DEPC)
三、試劑配製:
1、DEPC水:吸出1ml放在1000ml雙蒸水中配成1‰DEPC水,放在1000ml容量瓶中靜置4小時備用。
2、75%乙醇:用無水乙醇DEPC水配,然後放-20℃保存(其中DEPC水需先高壓)
3、異丙醇:放入棕色瓶中
4、氯仿:放入棕色瓶中
5、瓊脂糖
僅供參考
『貳』 RNA轉錄為cDNA的試劑盒有哪幾種,優缺點各是什麼
說白啦,你就是要逆轉錄試劑盒啦。每個課題組用的都不一樣,我們課題組用的比較多的是OneShine™First Strand cDNA Synthesis Kit。給你發下說明吧。

手指輕微彈震PCR管以混勻體系,若液體濺到蓋子內壁上則短暫低速離心使其下沉入管底。
3.把經過2處理後的PCR管放入PCR儀中,如果使用Oligo (dT)18Primer或gene specific Primer,則設置反應程序為42℃ 60 min,若使用Random Hexamer Primer,則設置反應程序為37℃ 60 min。
4.85℃ 5 min即可終止反應。
III注意事項
1. 試劑應儲存在-20℃。
2. 合成的第一鏈cDNA可馬上用於第二鏈的合成、PCR、qPCR或線性RNA的擴增,若要長期保存則建議置於-70℃以下。
3. M-MLV 5×Reaction Buffer是一種適配於後續多種實驗的酶緩沖液,在進行下一步實驗前不需要再用苯酚抽提和乙醇沉澱。
4. cDNA第二鏈合成的標准操作方法見:Sambrook, J., Fritsch, E. F. and Maniatis, T. (1989) In: Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, 8.64.
5. 總RNA中必須沒有胍鹽、多胺、亞精胺、焦磷酸鹽、磷酸鹽、金屬離子、SDS、EDTA、乙醇和苯酚等,因為這些物質可以抑制逆轉錄酶的活性。
6. 總RNA必須沒有DNA污染,可以對總RNA直接進行RT-PCR以驗證是否有DNA的污染。也可以設置跨內含子的引物用於後續的RT-PCR實驗。可以用DNaseI對總RNA做cDNA第一鏈合成前的處理,如OneShine DNaseI。DNaseI處理總RNA的標准操作方法見:Wiame, I. et al., Irreversible heat inactivation of DNaseI without RNA degradation, Bio Techniques, 29, 252-256, 2000.
7. cDNA第一鏈合成實驗所用的PCR管、吸頭等需用DEPC水處理過,以防止RNase對總RNA的降解。
8. 在進行cDNA第一鏈的合成實驗之前可以對所提取的總RNA進行電泳檢測,電泳試劑盒和電泳槽也需用DEPC水配製或重洗,如OneShine DEPC水、OneShine RNase free電泳buffer;電泳的條帶中28S和18S的邊緣應清晰才表明所提的總RNA質量達到要求。
9. 可以設置不同的Control以證明是否存在影響所研究RNA的實際拷貝數的因素,比如不加模板、不加M-MLV Reverse Transcriptase的陰性Control實驗,GAPDH RNA的陽性Control實驗等。
10. 在進行後續的RT-PCR時,可以對cDNA第一鏈進行稀釋。
『叄』 熒光定量pcr和實時熒光定量pcr還有反轉錄pcr都是什麼呀有什麼區別,分別是什麼作用啊
實時就是指每個階段的熒光都有收集,其實現在所有的熒光定量PCR儀器都是實時的.熒光定量PCR的英文簡寫是:FQ-PCR,F是熒光的縮寫,Q是定量的縮寫.(或者寫成是RT-PCR.RT就是realtime的縮寫).
做定量PCR的目的是為了了解起始模板數的量,這個一下寫不清楚,你看一個說明書絕對看得懂.
而反轉錄PCR就是把mRNA反轉錄成cDNA,簡寫也是RT-PCR.不過和上面的不同!這個RT是reverse transcript的縮寫!
其實啊,對於做表達量的實驗而言,反轉錄PCR是熒光定量PCR的第一步,很多人是這么來描述的:RT-qPCR.這個RT就是反轉錄,這個q是指定量.
總之,自己好好看說明書!
『肆』 要做(mRNA)RT PCR,需要的儀器有哪些
首先,RT不是證明RNA有無表達的很好方法,RT批不出來會有很多原因,並不僅僅是沒有模板。建議你做northern。
做RT需要
1,很乾凈整潔的實驗環境,RNA提取對操作環境的要求很高。
2,電動組織分散儀(IKA公司的T10那種)或研缽+液氮或玻璃組織研磨器,以上提取效果遞減。
3,1.5ml管冷凍離心機。
4,移液槍1ml、200ul、10ul一套,最好專用。
5,紫外分光光度計、石英狹縫比色皿。
6,核酸電泳儀、電泳槽(電泳槽最好專用)
7,RNase
free的各式槍頭、1.5ml離心管;RNase
free的雙蒸水。
8,如果樣品不會立即進入下一步實驗,建議具備超低溫冰箱。
『伍』 ABI 7500 PCR儀可以做逆轉錄嗎
可以,只要能夠滿足精確的溫度控制就可以.根據所用逆轉錄酶的反應溫度,選擇37C,42C或者50C直接進行逆轉錄反應就可以了.所以PCR儀沒有任何問題的.
『陸』 逆轉錄的工具
轉錄所需工具應為DNA解旋酶和RNA聚合酶.翻譯所需工具應為tRNA,mRNA是翻譯所需的模板.
『柒』 ABI 7500 PCR儀可以做逆轉錄嗎
可以,只要能夠滿足精確的溫度控制就可以。根據所用逆轉錄酶的反應溫度,選擇37C,42C或者50C直接進行逆轉錄反應就可以了。所以PCR儀沒有任何問題的。
『捌』 反轉錄時用水浴鍋控制溫度好還是pcr儀好
反轉錄時用水浴鍋控制溫度好還是pcr儀
水浴鍋是實驗室常用的恆溫設備,水浴鍋的液體介質是水,沸點溫度通常為100攝氏度。在標准環境下燒開水時,無論燒的火有多大,時間有多長,只要還有水在沸騰,它的溫度一定是100度。這樣,用水浴鍋加熱就可以控制一個恆定的溫度。
水浴鍋主要適用於各大中院校、科研企事業單位的實驗室和化驗室,數顯電子恆溫水浴鍋廣泛位用於乾燥、濃縮,蒸餾、浸漬化學試劑,浸漬葯品和生物製品,也可用於水浴恆溫加熱和其它溫度試驗,是生物、遺傳、病毒、水產、環保、醫葯、衛生、生化實驗室、分析室教育科研的必備工具。對各種化學樣品,生物製品進行蒸餾、乾燥、濃縮及溫漬,是實驗室不可缺少的實驗器材。
『玖』 RPA試劑及試劑盒,提取RNA,然後做逆轉錄需要什麼試劑及試劑盒謝謝了,大神幫忙啊
trizol法提取大小RNA,trizol買invitrogen公司的。 逆轉錄用promega公司 http://proct.bio1000.com/100167/ 的M-MLV
『拾』 提取RNA,然後做逆轉錄需要什麼試劑及試劑盒
看你要提什麼RNA了,如果是總RNA建議用TRIZOL法,反轉錄用一步法或兩步法反轉錄試劑盒,如果你要做雙鏈cDNA,接下來還要進行第二條鏈合成,有雙鏈cDNA合成試劑盒,也有這兩步都包括的試劑盒。