血塗片的白細胞怎麼換成儀器上的

Ⅰ 顯微鏡下看人血塗片,只見紅細胞,不見白細胞。需怎麼做才能看到白細胞

需要染色才行。紅細胞無核，白細胞有核，核嗜鹼性，藍染，就能看見了。

Ⅱ 醫院血常規化驗時，醫生是把血做成血塗片放在顯微鏡下觀察嗎（請看描述）

（1）由圖可知：①是白細胞，②是紅細胞，③是血小板．顯微鏡呈現的是倒立的、放大的實像，所以，看到的與實際的恰好相反，要將視野中右上角的圖①白細胞移至視野中央，看似要向左下角移動玻片，恰好相反應向右上角移動玻片．故D符合題意．
（2）紅細胞里有一種紅色含鐵的蛋白質，叫血紅蛋白，血紅蛋白在含氧量多的地方與氧容易結合，在含氧量少的地方與氧容易分離，紅細胞具有運輸氧的功能，此外，紅細胞還運輸一部分二氧化碳．
（3）血小板比紅細胞和白細胞都小得多，形狀不規則，沒有細胞核，一般在顯微鏡下不容易找到，血小板有止血和加速凝血的功能．當它的數目明顯下降時，會引起人體皮下出血．
（4）血漿的功能主要有：運載血細胞、運輸養料和廢物．由消化道吸收的養料，依靠血液中的血漿來運輸才能到達全身各組織．同時組織代謝產生的二氧化碳與其他廢物也要靠血漿運輸到肺、腎等處排泄，從而保證身體正常代謝的進行．
（5）紅細胞具有運輸氧氣的功能，由於該同學的紅細胞數目小於參考值，而且血紅蛋白的數目也小於參考值，所以她患有貧血．醫生建議他補充含鐵或蛋白質豐富的食物．
故答案為：（1）D；（2）②紅細胞；（3）血小板；（4）血漿；（5）紅細胞；貧血；鐵．

Ⅲ 編寫使用油鏡觀察血塗片中白細胞的詳細操作步驟

（一）樣本採集
將靜脈血採集於EDTA－K2抗凝劑中（濃度為每毫升血液含1.5～2.2mg EDTA－K2·H2O）。采血後立即混勻，應拒絕分析有肉眼可見凝塊的樣本。
（2）血塗片制備
血塗片制備是否合格、染色的好壞直接關繫到檢驗結果的質量。
1、要求所用玻片清潔、乾燥、無塵，大小為25 mm×75mm，厚度為0.8～1.2mm。使用載玻片時， 不要用手觸及玻片表面。
2、做好明確標記。
3、使用EDTA－K2抗凝血液樣本時，應在採集後4小時內制備血塗片。在製片前，樣本應充分混勻。注意，樣本不能冷藏。
4、每份樣本製作3張血塗片。
5、如果樣本中白細胞數量少時，需要制備更多血塗片（如6張）。
6、用楔形技術制備血塗片。在玻片近一端1/3處，加一滴（約0.05ml）充分混勻的血液，握住另一張較狹窄的、邊緣光滑的推片，從血滴前沿方向接觸血液，以30o～45o角使血滴沿推片迅速散開，快速、平穩地推動推片至玻片的另一端。
7、血細胞比容與塗片關系。血細胞比容高於正常時，紅細胞較多，血液粘度較高，用較小的角度塗片，可獲得滿意的血膜。相反，血細胞比容低於正常時，血液粘度較低，需用較大角度塗片。
8、良好血塗片的要求
1) 血膜至少長25mm，至玻片兩側邊緣的距離至少為5mm。
2) 血膜邊緣要比玻片邊緣窄，且邊緣光滑，適用於油鏡檢查。
3) 血細胞從厚區到薄區逐步均勻分布，末端呈方形或羽毛狀。
4) 血膜末端無粒狀、劃線或裂隙。所有這些情況會使白細胞集中在這些區域內。
5) 在鏡檢區域內，白細胞形態應無人為異常改變。通常，隨著保存時間的延長，抗凝血會造成白細胞形態的改變，如胞漿內形成空泡，核分解破裂等。應將抗凝血液保存時間的影響減小到最低限度。除部分淋巴細胞增生性疾病外，鏡檢區域內破損白細胞量應<2％。
6) 無人為污染。
9、 血膜必須充分乾燥，否則在染色過程中容易脫落

Ⅳ 什麼是白細胞分類計數

白細胞分類計數的方法在臨床上分手工和儀器兩種方法。血塗片白細胞分類計數是血液塗片後經瑞氏染色後，油鏡下根據白細胞形態特點逐個分類計數（一般計數100-200個白細胞），並觀察其形態的變化，然後求各種白細胞的比值（百分比）。儀器法是利用庫爾特的電阻抗法、激光散射法的原理，根據不同角度的光（前向散射光、側向散射光等）與不同白細胞的形態（大小、核、顆粒等內容物）來計算各種不同細胞的比值。

Ⅳ 血塗片的血塗片-實驗步驟

4.1ABO血型鑒定
4.1.1取一塊清潔玻片，用記號筆標上記號。
4.1.2用小滴管吸A型標准血清（抗B）一滴加入左側，用另一小滴管吸B型標准血清（抗A）一滴加入右側
4.1.3以穿刺法自左手無名指指尖取血，在玻片的每側各放入一小滴血，用牙簽攪拌，使每側抗血清和血液混和。每邊用一支牙簽，切勿混用。
4.1.4靜置室溫下10—15min後，觀察有無凝集現象，並據此判斷血型。
4.2血塗片的製作及血細胞觀察
4.2.1取末捎血一滴置於玻片的一端,左手持載玻片,右手以邊緣平滑的推片的一端從血滴前方後移接觸血滴，血滴即沿推片散開。然後便推片與載片夾角保持30-45度平穩地向前移動,載片上保留下一薄層血膜
4.2.2血塗片製成後可手持玻片在空氣中揮動,使血膜迅速乾燥,以免血細胞皺縮.
4.2.3用蠟筆在血膜兩側劃線,以防染液溢出,然後將血膜平放在染色架上.加瑞氏染液2-3滴,使覆蓋整個血膜,固定0.5-1.0分鍾.滴加等量或稍多的新鮮蒸餾水,與染料混勻染色5-10分鍾.
4.2.4用清水沖去染液,待自然乾燥後或用吸水紙吸干,即可置血塗片於顯微鏡下進行鏡檢。
4.2.5白細胞分類計數。
選擇塗片的體尾交界處染色良好的區域,在油鏡下計數100個紅細胞,按其形態特徵進行分類計數,求出各類細胞所佔比值。
1.瑞氏染液:瑞氏染料1g加甲醇(AR)600ML。將瑞氏染料放在清潔乾燥乳缽中,加少量甲醇,充分研磨使染料溶解.將已完全溶解的部分倒入棕色試劑瓶中,未溶解部分再加少量甲醇研磨,直至染料完全溶解於甲醇為止。新配製的染料偏鹼,須在室溫和37℃下一定時間待染料成熟,主要美藍逐漸增多為天青B後才能使用.貯存時間越久染色效果越好,因此,Deamgilliland等採用吸光度比值(rA)作為瑞氏染料的質量規格.rA測定方法如下:取瑞氏染液15-25ul(視染液濃度而定)加甲醇10ml稀釋,混勻後以甲醇為空白管分別以波長650nm,525nm比色,rA=A650/A525。因為美藍吸收峰為波長650nm,伊紅吸收峰波長為525nm,天青B吸收峰也為650nm,但吸光度A約為美藍的一半.所以新配製染料的RA接近2,隨著美藍逐漸氧化為天青B,RA也相應下降,RA下降達1.3±0.1即可使用.瑞氏染料在貯存過程中必須塞嚴,以防甲醇揮發和氧化為甲酸.有人主張配方中加入30ml甘油,防止甲酸揮發,並可使細胞染色清晰.甲醇必須純凈,如甲醇中丙酮含量過多,染色偏酸,使細胞著色不良。磷酸鹽緩沖液(PH6.4-6.8)：磷酸二氫鉀0.3g加磷酸氫二鈉0.2g再加蒸餾水至1000ml,配製成磷酸鹽緩沖液調整PH,如無緩沖液可用新鮮蒸餾水代替。

Ⅵ 如何用顯微鏡檢驗血液，製作塗片

血塗片的顯微檢查是血液細胞學檢查的基本方法，臨床上應用極為廣泛，制備厚薄適宜，分布均勻，染色良好的血塗片是血液學檢查的重要基本技術之一。
塗片法製片是生物顯微製片的基本方法之一。

步驟：
可分5個步驟進行
消毒→取血→推片→染色→觀察

消毒與取血
消毒
先按摩取血部位，使血流通暢；再用酒精消毒采血針和取血部位（如指尖）。
取血
待酒精幹後，刺破皮膚，使血自然流出，勿擠。取干凈載片，讓血滴在離載片一端中4～5毫米處，注意手指持握載片的邊緣，勿觸及其表面。不能使載片接觸取血部位的皮膚。

推片
取一塊邊緣光滑的載片做推片。將其一端置於血滴前方，向後移動到接觸血滴，使血液均勻分散在推片與載片的接觸處。然後使推片與載片呈30°～40°角，向另一端平穩地推出，如右圖所示。塗片推好後，迅速在空氣中搖，使之自然乾燥。

染色
用特種玻璃鉛筆在血膜兩側畫兩條線，防止染液外溢。再將瑞氏染液(伊紅-亞甲基藍)滴在血膜上，至染液淹沒全部血膜，染半分鍾。加等量蒸餾水(或緩沖液)與染液混合再染5分鍾。最後用蒸餾水把染液沖掉，用吸水紙吸干，自然乾燥後，即可觀察。

觀察
紅細胞
淡紅色，無核的圓形細胞，因紅細胞為雙凹形，故邊緣部分染色較深，中心較淺，直徑7-8微米。
顆粒白細胞
嗜中性顆粒白細胞：體積略大於紅細胞，細胞核被染成紫色分葉狀，可分1-5葉。直徑10-12微米。
嗜酸性顆粒白細胞：略大於嗜中性白細胞，細胞核染成紫色，通常為2葉，胞質充滿嗜酸性大圓顆粒，被染成鮮紅色。直徑10-15微米。
嗜鹼性顆粒白細胞：體積略小於嗜酸性白細胞，細胞質中有大小不等被染成紫色的顆粒，顆粒數目較嗜酸性白細胞的顆粒少，核1-2葉，染成淡藍色。直徑10-11微米。