㈠ 正常屏障系統動物實驗室內的氣壓，相對室外是什麼壓力
1、 以下關於CO2培養箱使用注意事項的說法錯誤的是： (答案：B)
A．組織培養皿需放在塑料盤內進行孵育 B．培養瓶和碟可以疊放
C．定期清潔和消毒 D. 專人管理，每天檢查CO2、管道，防止漏氣，檢查溫度等
2、 被微生物等生物材料污染的金屬器皿不可以採用以下哪種溶液進行消毒? (答案：C)
A．2%的戊二醛 B. 75%酒精溶液
C. 1%的漂白粉溶液 D. 高濃度肥皂水
3、 病原生物材料在勻漿或攪拌後，容器應在以下哪個場所進行開啟? (答案：B)
A. 實驗台上 B. 生物安全櫃內
C. 無菌室內 D. 超凈工作台
4、 玻璃（細菌）濾器使用後，立即用以下哪種溶液抽濾一次，當洗滌液尚未濾盡時，將濾器浸入上述洗滌液中浸泡48 h（濾片兩面均應接觸洗滌液）。 (答案：C)
A．1%的鹽酸 B．重鉻酸鉀洗滌液
C. 濃硫酸-硝酸鈉洗滌液 D. 氫氧化鈉或碳酸氫鈉稀溶液
5、 以下能用於消毒的氣體熏蒸劑是： (答案：A)
A. 甲醛 B. 乙醚
C. 氨水 D. 乙醇
6、 採用熏蒸法滅菌，熏蒸過程至少密閉保持多少時間？ (答案：A)
A. 12h B. 24h
C. 6h D. 8h
7、 關於生物安全櫃的操作，正確的說法是？ (答案：D)
A. 工作前和工作後，應至少讓生物安全櫃工作5min來完成「凈化」過程，亦即應留出將污染空氣排出生物安全櫃的時間 B. 操作者在雙臂進出生物安全櫃時，應垂直緩慢地出入前面的開口，以維持操作面開口處氣流的完整性
C. 在手和雙臂伸入到生物安全櫃中大約1min，即讓生物安全櫃調整完畢，且讓裡面的層流空氣凈化後，才可以進行操作 D. 以上都對
8、 過濾除菌操作時,將菌液注入濾器過濾，時間不宜過長，壓力控制在多少為宜？ (答案：B)
A. 0～30mmHg B. 100～200mmHg
C. 200～500mmHg D. 500～600mmHg
9、 過濾除菌操作時，濾器和過濾瓶等裝置使用前用什麼設備進行消毒滅菌？ (答案：B)
A．烘箱 B．高壓滅菌鍋
C. 加熱真空烘箱 D. 微波爐
10、 "以下過濾除菌操作的正確順序是： a. 使用前，將濾器和過濾瓶等全部裝置用紙包好經高壓滅菌b. 用橡皮管以無菌操作將過濾瓶、安全瓶、壓差計和抽氣系統連接c. 將待過濾液體注入濾器過濾，時間不宜過長，壓力控制在100-200mmHg為限d. 使用時，在無菌操作條件下將濾器安裝到過濾瓶上" (答案：D)
A. abcd B. adcb
C. abdc D. adbc
11、 浸泡消毒時，經常採用殺菌譜廣、腐蝕性弱的水溶性化學消毒劑，常用的有： (答案：A)
A．漂白粉（次氯酸鈉） B. 來蘇兒（甲酚）
C. 福爾馬林（甲醛） D. 戊二醛
12、 開啟凍干物質安瓿瓶時，由於壓力降低其部分凍干物可能會濺出，應在什麼設施內進行操作？ (答案：C)
㈡ 過濾除菌操作時,濾器和過濾瓶等裝置使用前用什麼設備進行消毒滅菌
過濾除菌操作時,濾器和過濾瓶等裝置使用前用高壓蒸鍋進行消毒滅菌
㈢ 用於培養基的消毒滅菌的儀器是
培養基的滅菌方法
1、高壓蒸汽滅菌：
高壓蒸汽滅菌適合於耐高溫培養基、接種器械和蒸餾水的滅菌。培養基在愛制備過程中混入各種雜菌，分裝後應立即滅菌，至少應在24h內完成滅菌工作。滅菌時一般是在0.105MPa壓力下，溫度121℃時，滅菌15~30min即可。消毒時間不宜過長，也不能超過規定的壓力范圍，否則有機物質特別是維生素類物質就會在高溫下分解，失去營養作用，也會使培養基變質、變色，甚至難以凝固。將蒸餾水或自來水裝在三角瓶中，裝水量一般不超過瓶的2/3，用牛皮紙或硫酸紙包紮封口，然後放入高壓鍋中滅菌後即為無菌水。 滅菌後的培養基可放到培養室中預培養3d，若無污染現象，則證明滅菌是徹底的，可以使用。暫時不用的培養基最好置於10℃下保存。含IAA或GA3的培養基應在1周內用完，其他培養基最多也不要超過1個月。
2、過濾滅菌：
一些植物生長調節劑及有機物，如IAA、GA3、ZT、CM等，遇熱容易分解，不能與培養基一起進行高溫滅菌，而要使用細菌過濾器濾去其中的雜菌。細菌過濾器與濾膜（孔徑0.45微米）使用之前要先進行高壓滅菌。過濾後的溶液要立即加入培養基中，若為液體培養基，可在培養基冷卻至30℃時加入；若為固體培養基，必須在培養基凝固之前（50-60℃）加入，振盪使溶液與其他成分混合均勻。
㈣ 關於實驗室抽慮除菌的操作
問：最近要做一些培養基，有一些糖類需要過濾除菌，但不知道怎麼操作，還需要什麼輔助設備？
答：你只要有濾膜和配套的過濾器就可以了，一般在超凈工作台上進行。濾膜用0.22微米或0.45微米兩種規格，指的是濾膜的孔徑大小吧。一般0.22就夠了！
答：如果溶液的量比較大，超過500ml，可以採用已滅菌的抽濾瓶，預先墊好0.22um 的濾膜。抽濾瓶滅菌前要檢查封口用紗布或棉花堵牢，使用時，不用在無菌室中進行，只要保證收集瓶無菌狀態就可以。抽濾後，過濾好的溶液在無菌條件下倒進已滅菌的空試劑瓶中。
如果用小量的溶液過濾，無菌室內用一次性注射器和一次性0.22um濾膜（millipore或pall都有賣）就可以。
答：看過濾的量，如果量小，用注射器加濾器、0.22微米濾膜過濾，濾器加上濾膜後蓋緊，稍旋松，飯盒密封100度蒸餾水煮沸30分鍾滅菌，用來承接無菌糖水的瓶需高壓。用時在無菌操作台上操作，並先旋緊濾器，注意濾器外流下去的哪怕一滴也會造成染菌；過濾應該是費力的，如果感覺很輕松，則濾膜已破。0.45微米的濾膜一般用於兩次過濾的第一次，以防止0.22堵塞。注射器，若能高壓更好些。
如果量大，正壓可用蠕動泵接皮管接不銹鋼濾器大張濾膜，這些都是要高壓的。負壓可用抽濾。
㈤ 含糖培養基除菌用什麼消毒滅菌法
消毒與滅菌的方法
滅菌是用物理或化學的方法來殺死或除去物品上或環境中的所有微生物。消毒是用物理或化學的方法殺死物體上絕大部分微生物 ( 主要是病原微生物和有害微生物 ) 。消毒實際上是部分滅菌。
在微生物實驗、生產和科研工作中，需要進行純培養，不能有任何雜菌，因此，對所用器材、培養基要進行嚴格滅菌，對工作場所進行消毒，以保證工作順利進行。
消毒與滅菌的方法很多，一般可分為加熱、過濾、照射和使用化學葯品等方法。
1 、加熱法
加熱法又分乾熱滅菌和濕熱滅菌兩類。
1 ）乾熱滅菌
有火焰燒灼滅菌和熱空氣滅菌兩種。火焰燒灼滅菌適用於接種環、接種針和金屬用具如鑷子等，無菌操作時的試管口和瓶口也在火焰上作短暫燒灼滅菌。通常所說的乾熱滅菌是在電烘箱內滅菌，此法適用於玻璃器皿如吸管和培養皿等的滅菌，在熱空氣 160 ℃ -170 ℃下保溫 2 小時進行滅菌。
2 ）濕熱滅菌
⑴高壓蒸汽滅菌法 此法是將物品放在高壓蒸汽滅菌鍋內 1.05kg ／ cm 2 (15 磅 / 英寸 2 ) ， 121.3 ℃保持 15-30 分鍾進行滅菌。時間的長短可根據滅菌物品種類和數量的不同而有所變化、以達到徹底滅菌為准。這種滅菌適用於培養基、工作服、橡皮物品等的滅菌。
⑵間歇滅菌法 有少數培養基例如明膠培養基、牛乳培養基、含糖培養基等用乾熱滅菌和高壓蒸汽滅菌均會受到破壞，則必須用間歇滅菌法。此法是用阿諾氏流動蒸汽滅菌器進行滅菌。該器底層盛水，頂部插有溫度計，加熱後水蒸汽溫度達到 100 ℃時，即循環流於器內，水蒸汽碰到器內物體時，又凝成水，流至底層貯水處，故不至乾涸。滅菌時，將培養基放在器內，每天加熱 100 ℃ 30 分鍾、連續三天，第一天加熱後，其中的營養體被殺死，將培養基取出放室溫下 18-24 小時，使其中的芽孢發育成為營養體，第二日再加熱 l00 ℃ 30 分鍾，發育的營養體又被殺死，但可能仍留有芽孢，故再重復一次，使徹底滅菌。一般凡能用高壓蒸汽滅菌的物品均不採用此法滅菌。
⑶煮沸消毒法 注射器和解剖器械等可用煮沸消毒法。一般微生物學實驗室中煮沸消毒時間為 10-15 分鍾，人用注射器和手術器械在有條件的地方，一般均採用高壓蒸汽滅菌法或乾熱滅菌法滅菌。
2 、過濾滅菌
許多材料例如血清與糖溶液應用一般加熱消毒滅菌方法，均會被熱破壞，因此，採用過濾除菌的方法。應用最廣泛的過濾器有蔡氏 (Seitz) 過濾器和膜過濾器。蔡氏過濾器是用銀或鋁等金屬做成的，分為上、下兩節、過濾時，用螺旋把石棉板緊緊地夾在上、下兩節濾器之間，然後將溶液置於濾器中抽濾。每次過濾必須用一張新濾板。濾膜過濾器的結構與蔡氏過濾器相似，只是濾膜是一種多孔纖維素 ( 乙酸纖維素或硝酸纖維素 ) ，孔徑一般為 0.45 m m ，過濾時，液體和小分子物質通過，細菌被截留在濾膜上，但若要將病毒除掉，則需更小孔徑的濾膜。
3 、紫外線滅菌
紫外線波長在 200-300nm ，具有殺菌作用，其中以 265-266nm 殺菌力最強。無菌室或無菌接種箱空氣可用紫外線燈照射滅菌。
4 、化學葯品滅菌
化學葯品消毒滅菌法是應用能殺死微生物的化學制劑進行消毒滅菌的方法。實驗室桌面、用具以及洗手用的溶液均常用化學葯品進行消毒滅菌。常用的有 2% 煤酚皂溶液 ( 來蘇爾 ) 、 0.25% 新潔爾滅、 1% 升汞、 3-5% 的甲醛溶液、 75% 酒精溶液等，
㈥ PET塑料瓶如何消毒殺菌（小企業）
PET瓶滅菌最好的方法是鈷60輻照，不開箱，不開外包，快速直接
㈦ 培養基，培養器皿和植物材料通常怎樣滅菌
常用的滅菌方法可分為物理的和化學的兩類，即：物理方法如乾熱（烘燒和灼燒）、濕熱（常壓或高壓蒸煮）、射線處理（紫外線、超聲波、微波）、過濾、清洗和大量無菌水沖洗等措施；化學方法是使用升汞、甲醛、過氧化氫、高錳酸鉀、來蘇水、漂白粉、次氯酸鈉、抗菌素、酒精化學葯品處理。這些方法和葯劑要根據工作中的不同材料不同目的適當選用。
1、培養基用濕熱滅菌
培養基在制備後的24小時內完成滅菌工序。高壓滅菌的原理是：在密閉的蒸鍋內，其中的蒸汽不能外溢，壓力不斷上升，使水的沸點不斷提高，從而鍋內溫度也隨之增加。在0.1mpa的壓力下，鍋內溫度達121℃。在此蒸汽溫度下，可以很快殺死各種細菌及其高度耐熱的芽孢。
注意完全排除鍋內空氣，使鍋內全部是水蒸氣，滅菌才能徹底。高壓滅菌放氣有幾種不同的做法，但目的都是要排凈空氣，使鍋內均勻升溫，保證滅菌徹底。常用方法是：關閉放氣閥，通電後，待壓力上升到0.05mpa時，打開放氣閥，放出空氣，待壓力表指針歸零後，再關閉放氣閥。
關閥再通電後，壓力表上升達到0.1mpa時，開始計時，維持壓力0.1-0.15mpa，20分鍾。
按容器大小不同，保壓時間有所不同。見表1。該表所列數字是徹底滅菌很保險的數字，如果容器體積較大，但是放置的數量很少，也可以減少時間。
表1. 培養基高壓蒸汽滅菌所必需的最少時間
容器的體積/ml
在121℃滅菌所需最少時間/min
20-50
15
75-150
20
250-500
25
1000
30
到達保壓時間後，即可切斷電源，在壓力到0.5mpa，可緩慢放出蒸汽，應注意不要使壓力降低太快，以致引起激烈的減壓沸騰，使容器中的液體四溢。當壓力降到零後，才能開蓋，取出培養基，擺在平台上，以待冷凝。不可久不放氣，引起培養基成分變化，以至培養基無法擺斜面。一旦放置過久，由於鍋爐內有負壓，蓋子打不開，只要將放氣閥打開，大氣壓入，內外壓力平衡，蓋子便易打開了。
對高壓滅菌後不變質的物品，如無菌水、栽培介質、接種工具，可以延長滅菌時間或提高壓力。而培養基要嚴格遵守保壓時間，既要保壓徹底，又要防止培養基中的成分變質或效力降低，不能隨意延長時間。
對於一些布製品，如實驗衣、口罩等也可用高壓滅菌。洗凈晾乾後用耐高壓塑料袋裝好，高壓滅局20-30分鍾。
高壓滅菌前後的培養基，其ph值下降0.2-0.3單位。高壓後培養基ph值的變化方向和幅度取決於多種因素。培養基中成分單一時和培養基中含有高或較高濃度物質時，高壓滅菌後的ph值變化幅度較大，甚至可大於2個ph值單位。環境ph值的變化大於0.5單位就有可能產生明顯的生理影響。
高壓滅菌通常會使培養基中的蔗糖水解為單糖，從而改變培養基的滲透壓。在8%-20%蔗糖范圍內，高壓滅菌後的培養基約升高0.43倍。
培養基中的鐵在高壓滅菌時會催化蔗糖水解，可使15%-25%的蔗糖水解為葡萄糖和果糖。培養基值小於5.5，其水解量更多，培養基中添加0.1%活性炭時，高壓下蔗糖水解大大增強，添加1%活性炭，蔗糖水解率可達5%。
為防止高壓滅菌產生的上述一些變化可用下列方法：
（1）經常注意搜集有關高壓滅菌影響培養基成分的資料，以便及時採取有效措施。
（2）設計培養基配方時盡量採用效果類似的穩定試劑並准確掌握劑量。如避免使用果糖和山梨醇而用甘露醇，以IBA代替IAA，控制活性炭的用量（在0.1%以下）注意ph值對高壓滅菌下培養基中成分的影響等。
（3）配製培養基時應注意成分的適當分組與加入的順序。如將磷、鈣和鐵放在最後加入。
（4）注意高壓滅菌後培養基ph值的變化及恢復動態。如高壓滅菌後的ph值常由5.8升高至6.48。而96小時後又會降至5.8左右。這樣在實驗中就可以根據這一規律加以掌握。
2、用於無菌操作的器械採用灼燒滅菌
在無菌操作時，把鑷子、剪刀、解剖刀等浸入95%的酒精中，使用之前取出在酒精燈火焰上灼燒滅菌。冷卻後，立即使用。操作中可採用250或500毫升的廣口瓶，放入95%的酒精，以便插入工具。
3、玻璃器皿及耐熱用具採用乾熱滅菌
乾熱滅菌是利用烘箱加熱到160-180℃的溫度來殺死微生物。由於在乾熱條件下，細菌的營養細胞的抗熱性大為提高，接近芽孢的抗熱水平，通常採用170℃持續90分鍾來滅菌。乾熱滅菌的物品要預先洗凈並乾燥，工具等要妥為包紮，以免滅菌後取用時重新污染。包紮可用耐高溫的塑料。滅菌時應漸進升溫，達到預定溫度後記錄時間。烘箱內放置的物品的數量不宜過多，以免防礙熱對流和穿透，到指定時間斷電後，待充分冷涼，才能打開烘箱，以免因驟冷而使器皿破裂。乾熱滅菌能源消耗太大，浪費時間。
4、不耐熱的物質採用過濾滅菌
一些生長調節劑，如赤黴素、玉米素、脫落酸和某些微生物是不耐熱的，不能用高壓滅菌處理，通常採用過濾滅菌方法。
一些化學成分在高溫高壓下會發生降解而失去效能或降低效能。經高溫滅菌後赤黴素GA3的活性僅及不經高溫滅菌的新鮮溶液的10%。蔗糖經高溫後部分被降解成d-葡萄糖和d-果糖，果糖又可被部分水解，產生抑制培養的植物組織生長的物質。高溫還可使碳水化合物和氨基酸發生反應。維生素具有不同程度的熱穩定性，但如果培養基的ph值高於5.5，則維生素b1會被迅速降解。泛酸鈣、植物組織提取物等要過濾滅菌，不能高溫滅菌，否則會失去作用。
防細菌濾膜的網孔的直徑為0.45微米以下，當溶液通過濾液後，細菌的細胞和真菌的孢子等因大於濾膜直徑而被阻，在需要過濾滅菌的液體量大時，常使用抽濾裝置；液量小時，可用注射器。使用前對其高壓滅菌，將濾膜裝在注射器的靠針管處，將待過濾的液體裝入注射器，推壓注射器活塞桿，溶液壓出濾膜，從針管壓出的溶液就是無菌溶液。
過濾除菌操作步驟：首先將過濾器、接液瓶用紙包好，濾膜可放在培養皿內用紙包好。使用前先經121℃高壓蒸汽滅菌30分鍾；在超凈工作台上，將濾器裝置裝好，用滅菌無齒鑷子將濾膜安放在隔板上，濾膜粗糙面向上；然後將待除菌的液體注入濾器內，開動真空泵即可過濾除菌。濾液經培養證明無菌生長後可保存備用。
5、空間採用紫外線和熏蒸滅菌
（1）紫外線滅菌在接種室、超凈台上或接種箱用紫外燈滅菌。紫外線滅菌是利用輻射因子滅菌，細菌吸收紫外線後，蛋白質和核酸發生結構變化，引起細菌的染色體變異，造成死亡。紫外線的波長為200-300nm，其中260nm的殺菌能力最強，但是由於紫外線的穿透能力很弱，所以只適於空氣和物體表面的滅菌，而且要求距照射物以不超過1.2米為宜。
（2）熏蒸滅菌用加熱焚燒、氧化等方法，使化學葯劑變為氣體狀態擴散到空氣中，以殺死空氣和物體表面的微生物。這種方法簡便，只需要把消毒的空間關閉緊密即可。
化學消毒劑的種類很多，它們使微生物的蛋白質變性，或競爭其酶系統，或降低其表面張力，增加菌體細胞漿膜的通透性，使細胞破裂或溶解。一般說來，溫度越高，作用時間越長，殺菌效果越好。另外，由於消毒劑必須溶解於水才能發揮作用，所以要製成水溶狀態，如升汞與高錳酸鉀。還有消毒劑的濃度一般是濃度越大，殺菌能力越強，但石炭酸和酒精例外。
常用熏蒸劑是甲醛，熏蒸時，房間關閉緊密，按5-8ml/m3用量，將甲醛置於廣口容器中，加5g/m3高錳酸鉀氧化揮發。熏蒸時，房間可預先噴濕以加強效果。冰醋酸也可進行加熱熏蒸，但效果不如甲醛。
6、一些物體表面用葯劑噴霧滅菌
物體表面可用一些葯劑塗搽，噴霧滅菌。如桌面、牆面、雙手、植物材料表面等，可用75%的酒精反復塗搽滅菌，1%-2%的來蘇兒溶液以及0.25%-1%的新潔爾滅也可以。
7、植物材料表面用消毒劑滅菌
從外界或室內選取的植物材料，都不同程度地帶有各種微生物。這些污染源一旦帶入培養基，便會造成培養基污染。因此，植物材料必須經嚴格的表面滅菌處理，再經無菌操作手續接種到培養基上，這一過程叫做接種。接種的植物材料叫做外植體（explant)。
啟維益成代理的植物組培抗菌劑（PPM）它是一種廣譜抗微生物劑，可以殺死細菌和真菌細胞，防止真菌孢子的萌發，並在較高濃度下能消除內源性污染的外植體。
首先，將采來的植物材料除去不用的部分，將需要的部分仔細洗干凈，如用適當的刷子等刷洗。把材料切割成適當大小，即滅菌容器能放入為宜。置自來水龍頭下流水沖洗幾分鍾至數小時，沖洗時間視材料清潔程度而宜。易漂浮或細小的材料，可裝入紗布袋內沖洗。流水沖洗在污染嚴重時特別有用。
洗時可加入洗衣粉清洗，然後再用自來水沖洗洗衣粉水。洗衣粉可除去輕度附著在植物表面的污物，除去脂質性的物質，便於滅菌液的直接接觸。當然，最理想的清洗物質是表面活性物質吐溫。
第二步是對材料的表面浸潤滅菌。要在超凈台或接種箱內完成，准備好消毒的燒杯、玻璃棒、70%酒精、消毒液、無菌水、手錶等。用70%酒精浸泡10-30秒。由於酒精具有使植物材料表面被浸濕的作用，加之70%酒精穿透力強，也很易殺傷植物細胞，所以浸潤時間不能過長。有一些特殊的材料，如果實、花蕾、包有苞片、苞葉等的孕穗，多層鱗片的休眠芽等等，以及主要取用內部的材料，則可只用70%酒精處理稍長的時間。處理完的材料在無菌條件下，待酒精蒸發後再剝除外層，取用內部材料。
第三步是用滅菌劑處理。表面滅菌劑的種類較多，可根據情況選取1-2種使用（表2）。
表2. 常用滅菌劑使用濃度及效果比較
滅菌劑名稱
使用濃度
滅菌時間/min
滅菌效果
酒精
70-75%
0.1-3
好
氯化汞
0.1-0.2%
2-10
很好
漂白粉
飽和溶液%
5-30
很好
次氯酸鈣
9-10%
5-30
很好
次氯酸鈉
2%
5-30
很好
過氧化氫
10-12%
5-15
好
抗菌素
4-50mg/L
30-60
較好
上述滅菌劑應在使用前臨時配製，氯化汞可短期內儲用。次氯酸鈉和次氯酸鈣都是利用分解產生氯氣來殺菌的，故滅菌時用廣口瓶加蓋較好；升汞是由重金屬汞離子來達到滅菌的；過氧化氫是分解中釋放原子態氧來殺菌的，這種葯劑殘留的影響較小，滅菌後用無菌水漂洗3-4次即可；由於升汞液滅菌的材料，難以對升汞殘毒去除，所以應當用無菌水漂洗8-10次，每次不少於3分鍾，以盡量去除殘毒。
滅菌時，不瀝乾的植物材料轉放到燒杯或其他器皿中，記好時間，倒入消毒溶液，不時用玻璃棒輕輕攪動，以促進材料各部分與消毒溶液充分接觸，驅除氣泡，使消毒徹底。在快到時間之前1-2分鍾，開始把消毒液傾入一備好的大燒杯內，要注意勿使材料倒出，傾倒干凈後立即倒入無菌水，輕攪漂洗。滅菌時間是從倒入消毒液開始，至倒入無菌水時為止。記錄時間還便於比較消毒效果，以便改正。滅菌液要充分浸沒材料。寧可多用些滅菌液，切勿勉強在一個體積偏小的容器中使用很多材料滅菌。
在滅菌溶液中加吐溫-80或triton X效果較好，這些表面活性劑主要作用是使葯劑更易於展布，更容易浸入到滅菌的材料表面。但吐溫加入後對材料的傷害也在增加，應注意吐溫的用量和滅菌時間，一般加入滅菌液的0.5%，即在100ml加入15滴。
最後一步是用無菌水漂洗，漂洗要求3分鍾左右，視採用的消毒液種類，漂洗3-10次左右。無菌水漂洗作用是免除消毒劑殺傷植物細胞的副作用。
㈧ 醫療器械行業滅菌最常用的方案是什麼
目前醫療器械廣泛採用環氧乙烷來滅菌的。 環氧乙烷是一種廣譜滅菌劑，可在常溫下殺滅各種微生物，包括芽孢、結核桿菌、細菌、病毒、真菌等。
㈨ 過濾除菌操作時，濾器和過濾瓶 等裝置使用前用什麼設備進行消 毒滅菌
過濾除菌操作時，濾器和過濾瓶等裝置使用前用高壓蒸鍋進行消毒滅菌