小鼠机械痛如何测

A. 小鼠实验怎么检测身体活动beam breaks

现在这个行业发展的不错，生物实验技术外包也会跟着发展，比如一些高校或者企业部分实验不想自己内部开展，或者涉及的设备比较昂贵，技术要求高，都会寻求外包。但是现在竞争也比较大，的得看单位这边整体做的怎么样。

做的比较好的，一般都是上海地区的，你可以看下基尔顿生物。

B. 给小鼠腹腔注射冰醋酸使其产生疼痛的机制

苯巴比妥钠具有良好的抗癫痫和抗惊厥作用，故其可以用于惊厥的治疗。而尼可刹米可以提高机体神经中枢的兴奋性，从而造成机体惊厥，故用尼可刹米复制惊厥模型后用苯巴比妥钠进行治疗，从而观察苯巴比妥钠的抗惊厥作用。 方法 分别前后腹腔注射苯巴比妥钠和尼可刹米后，观察惊厥发生的情况从而观察苯巴比妥钠的抗惊厥作用。 结果与分析 用苯巴比妥钠的小鼠惊厥率为0，而没有用的小鼠惊厥率高达100%，死亡率达50%，比较可以发现苯巴比妥钠具有良好的抗惊厥作用。

惊厥是由于中枢神经系统过度兴奋而引起的全身骨骼肌强烈的不随意收缩，出现强直性或者阵挛性抽搐。苯巴比妥钠属于苯巴比妥类药物，具有良好的中枢抑制作用，故具有抗癫痫和抗惊厥作用。本实验观察其抗惊厥作用。尼可刹米是一种呼吸兴奋剂，中毒剂量时可以造成机体惊厥甚至是死亡。由于尼可刹米的作用比较强而且本实验使用的是中毒剂量，故而应先腹腔注射一定量的苯巴比妥钠后，经过一定时间后再腹腔注射一定量的尼可刹米，观察有无惊厥的出现从而确定苯巴比妥钠的抗惊厥作用。

1 实验材料

1）实验动物：小白鼠

2）实验药品：苯巴比妥钠，尼可刹米，生理盐水

3）实验用具：注射器，电子称，小白鼠笼

2 实验步骤

1）每组取四只小鼠，称重，并分别编号为1,2,3,4号。

2）1,2两只小鼠腹腔注射苯巴比妥钠，0.1ml/10g，3,4两只小鼠腹腔注射生理盐水作为对照组，0.1ml/10g。

3）15min后，分别为四只小鼠注射尼可刹米，0.1ml/10g，并记录号时间。

4）观察并记录四只小鼠是否出现惊厥或者死亡。

3 实验结果

经过如上实验可以得到如下结果：表1

表1

对照组/实验组惊对照组惊实验组死对照组死亡组别 实验组/只 只 厥/只 厥/只 亡/只 /只

1 2 2 0 2 0 1 2 2 2 0 2 0 1 3 2 2 0 2 0 1 4 2 2 0 2 0 1 总数 8 8 0 8 0 4 注：实验组为注射苯巴比妥钠的小鼠，对照组为注射生理盐水的小鼠

通过计算百分率可得表2

实验惊厥百分率

0% 表2 对照惊厥百分率 实验死亡率 100% 0% 对照死亡率 50% 4 实验分析

由以上实验结果可以看到，注射苯巴比妥钠的小鼠没有出现惊厥，也没有死亡。而注射生理盐水的小鼠惊厥出现百分率高达100%，

且死亡率达到50%，通过比较两组实验结果，就可以明显的发现，苯巴比妥钠具有良好的抗惊厥作用，它是一种中枢神经系统抑制药，主要通过增强GABA 作用以及减弱谷氨酸作用而实现抗惊厥作用。

二 镇痛实验

摘要 目的 吗啡属于阿片类镇痛药，具有强大的镇痛作用，通过热刺激（热板法）或者化学刺激的方式引起小鼠疼痛，在经过吗啡镇痛后观测其痛阈的改变从而观察吗啡的镇痛作用，从而了解其镇痛效果和机制。 方法 热板法和化学刺激法 结果与分析 吗啡对热刺激或者化学刺激都具有良好的镇痛作用。

吗啡是阿片类镇痛药的代表药，具有良好的镇痛作用，其主要通过激动阿片受体从而产生镇痛作用，是临床常用药，也属于管制药。当给与一定的温度刺激时，小鼠会产生痛觉，小鼠由于脚部的疼痛而发生疼痛反应，从而出现舔后足的现象。出现此现象越快说明疼痛的潜伏期短，也就是痛阈越低。因此，可以通过比较小鼠出现舔足现象的时间来比较痛阈的大小。同理，给与小鼠腹腔化学刺激时，小鼠会出现扭体的现象。

1 实验材料

1) 实验动物：小白鼠

2) 实验药品：吗啡，生理盐水，醋酸

3) 实验器材：注射器，Woolfe 热板，电子称，秒表，鼠笼。 2 实验步骤

2-1 热板法

1）打开热板预热。取小鼠，筛选舔足时间在5s-30s之间 的小鼠，称重，分作两组，每组两只，作标记。

2）选定实验组和对照组，测定每只小鼠的舔足时间，记录。

3）实验组腹腔注射吗啡0.1ml/10g，对照组注射生理盐水0.1ml/10g。

4）给药后分别于15min,30min,45min测小鼠的舔足出现时间，并记录好。

2-2 化学刺激法

1）每组取四只小鼠，随机分作实验组和对照组，称重，做标记。

2）实验组腹腔注射吗啡0.1ml/10g，对照组腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。

3）20分钟后，两组小鼠分别腹腔注射醋酸0.1ml/10g，观察小鼠是否出现扭体现象并记录。

3 实验结果

根据以上实验，热板法可得如下表3的结果：

表3

组别

小鼠编

号 第二组 30给药前 15分钟 30分钟 45分钟 给药前 15分钟 分45分钟

钟 第一组

1 2 3 4 1 2 3 4 实验组均值 对照组均值

11 6 14 15

60 42 15

60 57 14

54 41 15 20

13.59 6.5 10.95 6.15

15 22 第三组

给药前 15分钟 30分钟 45分钟 给药前

25 16 18 19

56 60 45 30

60 60 30 20

60 60 28 18

23.41 14.18 57.76 40.58

43.

34.41 24 21.17 15.8 23 11.01

13.

13.44 57 9.18

10.

6.96 62 12.5 第四组

30

15分钟 分45分钟

钟 31.

25.61 22 20.04 31.17 60 56.76

27.

16.96 78 17.98 60 60 60

13.02 44.70 50.54 41.20 13.85 20.90 18.37 17.11

说明：1 表格中单位为秒。 2 由于第四组小鼠未经过筛选，故而舍去。

由此作出时-效曲线为图1所示：

镇痛与抗惊厥实验报告

而化学刺激法所得结果如下表4所示

组别 1 2 3 4 总数 实验组扭体百

分率 对照组扭体百

分率

实验组/只

2 2 2 2 8 0 100%

表4

实验组扭体/

对照组/只

只

2 0 2 0 2 0 2 0 8 0

对照组扭体/

只 2 2 2 2 8

4 分析

1）从表3及图1 可以看出，用药前实验组和对照组的痛阈几乎一样，而用药后，实验组的痛阈明显高于对照组，这说明吗啡能提高机体的痛阈值，从而具有良好的镇痛作用。

2）图1表明，在经过一段时间的代谢后，机体内的吗啡含量降低，从而痛阈值也跟着下降。

3）同样，表4中显示，注射吗啡后，扭体实验为全阴性而对照组为全阳性，同样说明了吗啡具有良好的镇痛作用。

C. 有没有测试疼痛的传感器

疼痛通常由导致组织损伤的伤害性刺激引起。刀割、棒击等机械 性刺激，电流、高温和强 疼痛
酸、强碱等物理化学因素均可成为伤害性刺激。组织细胞发炎或损伤时释入细胞外液中的钾离子、5-羟色胺、乙酰胆碱、缓激肽、组胺等生物活性物质亦可引起疼痛或痛觉过敏。受损局部前列腺素的存在极大地加强这些化学物质的致痛作用，而能抑制前列腺素合成的药物，如阿司匹林则具有止痛作用。全身皮肤和有关组织中分化程度最低的游离神经末梢，作为伤害性感受器，将各种能量形式的伤害性刺激转换成一定编码型式的神经冲动，沿着慢传导的直径较细的有髓鞘和最细的无髓鞘传入神经纤维，经背根神经节传到脊髓后角或三叉神经脊束核中的有关神经元，再经由对侧的腹外侧索传至较高级的疼痛中枢──丘脑、其他脑区以及大脑皮质，引起疼痛的感觉和反应。与此同时，快传导的直径较粗的传入神经纤维所传导的触、压等非痛信息已先期到达中枢神经系统的有关脑区，并与细纤维传导的痛信息发生相互作用。
你说的应该是疼痛传感器应该是受机械刺激。对于机械力的感知，有些测力的传感器，比如应变片，压力传感器。但要具体应用的话，技术上还有一定难度，比如针尖刺激，这些传感器可能不能做的那么小。只能感知大面积的撞击。

D. VON frey 丝测机械痛阈 数据处理求助

在这里是1;10000.0，对数值是log（1）为0，代入公式50%的缩足率为0..5；Xf是最后一次使用的纤维丝的对数值，对应的K值在表中查到为-0。当出现第一次OX或XO时，再测试四次从而得到一串序列，比如OXOXOX正常小鼠的测试范围一般在0.4到2.0之间。小鼠我们实验室从0.6的纤维丝开始测试，有反应换到上一级0.4，没反应换到下一级1.0，以后都是这样

E. 热板法测定痛域值的指标

【材料】

小鼠；超级恒温器；2.5g/L dolantin，2.5g/L rotundine sulfate，生理盐水。

【方法】

1．开启超级恒温器，调节超级恒温器温度恒定于55±0.1℃。

2．取雌性小白鼠数只，于实验前预先挑选合格者。方法为：将小白鼠放入瓷罐内记录时间，罐口盖以透明盖，观察到出现舐后足的时间为止，此段时间作为该鼠的热痛反应时间，记录之，凡小白鼠在30秒钟内不舐后足或放入瓷罐内发生逃避、跳跃者弃之。

【观察项目】

1．将筛选合格的小白鼠3只做好记号为甲、乙、丙，测每只小白鼠的正常痛阈值一次，作为该鼠给药前痛阈值。

2．甲鼠腹腔注射（i.p.）dolantin溶液25mg/kg(2.5g/L ，0.1ml/10g)，乙鼠

i.p. rotundine 溶液25mg/kg (2.5g/L ，0.1ml/10g)，丙鼠i.p.生理盐水 0.1ml/10g作为对照。用药后15min、30min、60min各测小白鼠痛阈一次，如果用药后放入瓷罐内60秒钟仍无反应，即将小白鼠取出，以免时间太长把脚烫伤，其痛阈可按60秒计算。

3．实验完毕，计算各给药组的用药前后各次的小鼠热痛反应时间(即痛阈值)的平均值，并按下列公式计算痛阈提高百分率。

【实验结果】

1. 杜冷丁组、罗通定组、对照组的小鼠在注射药物前的痛阈值无显著性差异（p>0.05）；

2. 注射后15min，杜冷丁组的小鼠的痛阈提高百分率为267%,痛阈值为55.2±9.48s，罗通定组的小鼠的痛阈提高百分率为106%，痛阈值为35.60±17.34s，杜冷丁组痛阈提高百分率更大，两者的痛阈值比较有显著性差异（p<0.05）； 3. 注射后30min，杜冷丁组的小鼠的痛阈提高百分率为244%，痛阈值为51.8±10.47 s，罗通定组的小鼠的痛阈提高百分率为142%，痛阈值为41.70±15.38 s，两者痛阈值无显著性差异（p>0.05）；

4. 注射后60min，杜冷丁组的小鼠的痛阈提高百分率为104%，痛阈值为30.70±15.67 s，罗通定组的小鼠的痛阈提高百分率为58%，痛阈值为27.30±18.02s，两者的痛阈值比较没有显著性差异（p<0.05）. 5. 具体实验结果记录与统计处理见下表：

F. 小鼠血常规用什么机器检测

可以用那个机器，或者你自己用显微镜数，就是正常值的范围是需要变动的，机器原理就是根据细胞的大小来分类的。

G. 怎么使小鼠钝痛

用一块宽木板敲它一下

H. 实验中如何判断小鼠发生了疼痛反应

我了解到的是有一些经典行为范式，比如说在底板上给电击刺激，如果小鼠抬脚的话，就表明它感受到了疼痛。
还有比如说你在小鼠的脚上涂一些刺激性的物质，如果它感觉到痛的话，就会抬脚去舔掉刺激性的物质。

I. VON frey 丝测机械痛阈 数据处理求助

正常小鼠的测试范围一般在0.4到2.0之间。小鼠我们实验室从0.6的纤维丝开始测试，有反应换到上一级0.4，没反应换到下一级1.0，以后都是这样。当出现第一次OX或XO时，再测试四次从而得到一串序列，比如OXOXOX，对应的K值在表中查到为-0.5；Xf是最后一次使用的纤维丝的对数值，在这里是1.0，对数值是log（1）为0，代入公式50%的缩足率为0.772681/10000。