A. PCR实验室污染了怎么处理
A. 实验室进行通风处理，至少2 周的时间；
通风可加速扩增产物的消散的速度
B. 使用清水对实验台面、实验室进行清洗；
DNA不溶于酒精，使用清水多次擦拭后可消除附在实验台面等的核酸DNA；
C. 使用紫外灯进行房间的照射；
紫外线及产生的臭氧都有破坏DNA结构的作用
D. 之前使用的灭菌锅使用清水清洗多次，不要和耗材等在一起灭菌；
E. 可用1mol/L 的盐酸对可疑器具或者实验台面进行浸泡或擦拭。
盐酸可使DNA脱嘌呤，破坏DNA的结构。
F. 若有条件，选择一个新的实验环境进行检测实验最好。
B. PCR实验室污染如何预防
1.PCR实验室严格分区
整个检测过程应严格分区进行：PCR反应体系的配置区，标本处理、加样区，PCR扩增、荧光检测及结果分析区。各区使用的仪器、设备、耗材和工作服应独立专用。
2.进行PCR操作时，工作人员应该严格遵守SOP操作规程
操作人员应经过专业培训，具有一定经验和操作技能。
3.分装PCR试剂
当使用的 PCR 试剂盒，不是独立分装的反应液时，应将PCR反应液先配置好，然后分装到反应管-20℃保存，以减少重复加样次数，避免污染。PCR试剂、PCR反应液与样品及PCR产物分开保存，试剂盒里面的阳性对照、阳性参考品也应该与试剂分开放置，不应放于同一冰箱。
4.正确使用加样器
吸样时要特别小心，应缓慢匀速，避免液体溅到加样器头上。尽量一次性吸完，忌反复多次抽吸，以免交叉污染或产生气溶胶。打出液体后拇指不应松开按钮，将吸嘴压掉后再将拇指松开，避免液体回吸。
5.做好实验室的清洁消毒
操作台、移液器、离心机、PCR扩增仪等仪器设备应经常用10%次氯酸或 75%酒精、紫外线灯或臭氧消毒处理。 特别是实验完成后，应立即清洁工作台，并进行消毒。
6.做好实验防护
使用不含荧光物质的一次性手套、一次性专用离心管、自卸式移液器和带滤嘴吸头。选择质量好的离心管，以避免样本外溢和外来核酸的进入，打开离心管前应先离心，将管壁及管盖上的液体甩至管底部，以防止管内液体溅出，造成污染。反应管中尽量避免气泡存在，管盖应盖紧。试剂准备和标本处理应使用超净工作台或防污染罩，以防止对环境污染。
C. 怎么防止PCR实验室污染
PCR实验室污染
标本间交叉污染：标本污染主要有收集标本的容器被污染，或标本放置时，由于密封不严溢于容器外，或容器外粘有标本而造成相互间交叉污染；标本核酸模板在提取过程中，由于吸样枪污染导致标本间污染;有些微生物标本尤其是病毒可随气溶胶或形成气溶胶而扩散，导致彼此间的污染。
PCR试剂的污染：主要是由于在PCR试剂配制过程中，由于加样枪、容器、双蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。
PCR扩增产物污染：这是PCR反应中最主要最常见的污染问题。因为PCR产物拷贝量大，远远高于PCR检测数个拷贝的极限，所以极微量的PCR产物污染，就可造成假阳就可形成假阳性。
还有一种容易忽视，最可能造成PCR产物污染的形式是气溶胶污染；在空气与液体面摩擦时就可形成气溶胶，在操作时比较剧烈地摇动反应管，开盖时、吸样时及污染进样枪的反复吸样都可形成气溶胶而污染。
实验室中克隆质粒的污染：在分子生物学实验室及某些用克隆质粒做阳性对照的检验室，这个问题也比较常见，因为克隆质粒在单位容积内含量相当高，另外在纯化过程中需用较多的用具及试剂，而且在活细胞内的质粒，由于活细胞的生长繁殖的简便性及具有很强的生命力，其污染可能性也很大。
污染监测
一个好的实验室，要时刻注意污染的监测，考虑有无污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。
对照试验
1、阳性对照：在建立PCR反应实验室及一般的检验单位都应设有PCR阳性对照，它是PCR 反应是否成功、产物条带位置及大小是否合乎理论要求的一个重要的参考标志。
2、阴性对照：每次PCR实验务必做阴性对照。它包括①标本对照：被检的标本是血清就用鉴定后的正常血清作对照；被检的标本是组织细胞就用相应的组织细胞作对照。②试剂对照：在PCR试剂中不加模板DNA或RNA，进行PCR扩增，以监测试剂是否污染。
3、重复性试验
4、选择不同区域的引物进行PCR扩增
防止污染的方法
进行PCR操作时，操作人员应该严格遵守一些操作规程，最大程度地降低可能出现的PCR污染或杜绝污染的出现。
划分操作区：目前，普通PCR尚不能做到单人单管，实现完全闭管操作，但无论是否能够达到单人单管，均要求实验操作在三个不同的区域内进行，PCR的前处理和后处理要在不同的隔离区内进行：
1. 试剂准备区。
2．标本制备区。
3. PCR扩增区及分析区。
切记：任何一间的产物及器材不要拿到其他两个工作区。
分装试剂：PCR扩增所需要的试剂均应在生物安全柜、装有紫外灯的超净工作台或负压工作台配制和分装。所有的加样器和吸头需固定放于其中，不能用来吸取扩增后的DNA和其他来源的DNA：
1．PCR用水应为高压的双蒸水；
2．引物和dNTP用高压的双蒸水在无PCR扩增产物区配制；
3．引物和dNTP应分装储存，分装时应标明时间，以备发生污染时查找原因。
实验操作注意事项
尽管扩增序列的残留污染大部分是假阳性反应的原因，样品间的交叉污染也是原因之一。因此，不仅要在进行扩增反应是谨慎认真，在样品的收集、抽提和扩增的所有环节都应该注意：
1. 戴一次性手套，若不小心溅上反应液，立即更换手套；
2. 使用一次性吸头，严禁与PCR产物分析室的吸头混用，吸头不要长时间暴露于空气中，避免气溶胶的污染；
3. 避免反应液飞溅，打开反应管时为避免此种情况，开盖前稍离心收集液体于管底。若不小心溅到手套或桌面上，应立刻更换手套并用稀酸擦拭桌面；
4. 操作多份样品时，制备反应混合液，先将dNTP、缓冲液、引物和酶混合好，然后分装，这样即可以减少操作，避免污染，又可以增加反应的精确度；
5. 最后加入反应模板，加入后盖紧反应管；
6. 操作时设立阴阳性对照和空白对照，即可验证PCR反应的可靠性，又可以协助判断扩增系统的可信性；
7. 尽可能用可替换或可高压处理的加样器，由于加样器最容易受产物气溶胶或标本DNA的污染，最好使用可替换或高压处理的加样器。如没有这种特殊的加样器，至少PCR操作过程中加样器应该专用，不能交叉使用，尤其是PCR产物分析所用加样器不能拿到其它两个区；
8. 重复实验，验证结果，慎下结论