配置大量元素母液需要什么仪器

Ⅰ 胡萝卜组织培养实验

取材部位应在胡萝卜去皮之后的边缘，胡萝卜中间的木质部和髓质部相对来说分化程度更高，因而胡萝卜的皮质部更适合用来做这个实验。胡萝卜组培的营养配方一般采用MS培养基，下面是配制分装及灭菌：
按表用量筒移取大量元素母液100ml，用专一对应的移液管分别吸取微量元素母液10mi、铁盐母液10ml、有机物母液（维生素）10ml，均置人1000ml定容瓶中，若不加任何激素，则为MSo培养基；若需加激素按配方移取激素母液即可。
将已装母液的定容瓶用蒸馏水或自来水定容到1000ml，取1／3左右倒人小铝锅中加热。同时，称好30g蔗糖，称琼脂丝7g(或琼脂粉)，也倾人小铝锅中，边加热边搅拌，防止
糊底。旺火煮开，再用文火加热，直至琼脂全部融化即清澈见底为度。(若用琼脂粉，应加入100ml左右的液体培养基，并搅拌均匀)。然后再倾入定容瓶内余下的液体培养基，摇晃均匀即可。
培养基配好后，要调整pH值。用0.1M的NaOH或HCl液调PH6.4—6.5。在培养基配方不大变动的情况下可用经验法。可以将连续三次测定所加入的酸或碱液的平均值作为以后调整的用量值。调后注意一定要摇动均匀，还要注意酸或碱液不要放置时间太久。
培养基合成后要趁热分装，100ml的容器约装入30～40ml培养基，即1L培养基约装35瓶左右。太多则浪费培养基，太少不易接种和影响生长。但要根据培养对象来决定。如果培养时间较长时，应适当多装培养基，生根等短期培养时，可适当少加培养基。分装时不要把培养基弄到管壁上，以免日后污染。装后用封口材料包上瓶口，扎口后，写上培养基种类，准备灭菌。注意不能放置时间过长，以免产生污染。
培养基用高压灭菌。打开锅盖，加水至水位线。把已装好培养基的三角瓶，连同蒸馏水及接种用具等放人锅筒内，装时不要过分倾斜培养基，以免弄到瓶口上或流出。然后盖上锅盖，对角旋紧螺丝，接通电源加热，当升至0.05MPa时，打开放气阀放气，回“0”，后关闭放气阀。当气压上升到0.10MPa时，保压灭菌20min，到时停止加热。当气压回“0”后打开锅盖，取出培养基，放于平台上冷凝。灭好的培养基不要放置时间太长，最多不能超过1周。

如果有什么不好的地方，请多指教。

Ⅱ 化学实验——配置一定浓度溶液需要哪些仪器 把作用也说一说

容量瓶:配制一定体积的溶液
托盘天平 :称质量
药匙：取固体药品
量筒 ：量液体药品
玻璃棒 ：搅拌,加速溶解,转移液体
烧杯 ：盛液体

Ⅲ 母液配置前称重物品应该

母液配置前称重物品应该培养基中的许多营养元素含量较少，如果每次配置培养基时都称量各种元素，既繁琐叉很难称量准确。为了节省时间，便于操作，在实际操作时。应先配成高浓度的母液，然后再吸取一定量的母液配制成所需浓度的培养基。工作母液能够简化培养基配制程序，从而节约大量的人力、时间，同时减少每次少量称量配制的误差。配制培养基最方便的方法是预先配制好不同组分的培养基母液，配成培养基配方使用浓度的10倍或100倍，甚至1000倍。这些母液包括无机盐、维生素以及在水溶液中稳定的生长调节物质等。平时应贮存在2-4℃冰箱内，待做培养基时取出，按比例稀释配用。母液的配制有两种方法：一种是配制成单一化合物母液；另一种是配成几种不同化合物的混合母液。前一种方法适合配制多种培养基都需要的同一种母液；后一种方法在大量配制同种培养基时省时省力。
现以MS培养基配制为例，在配制母液时为减少工作量可以把几种药品（如培养基中的大量元素或微量元素）配在同一母液中（表3-2），但应注意各种化合物的组合以及加入的先后顺序，以免发生沉淀。通常把每种试剂单独溶解后再与别的也已完全溶解的药品混合，或者待前一种化合物完全溶解后再加入后一种化合物。混合已溶解的各种矿质盐时还应注意先后顺序，力求把Ca2＋与SO42-和PO43-错开，以免形成硫酸钙或磷酸钙的不溶物。同时，要慢慢的混合，边混合边搅拌。

Ⅳ 培养基的配制操作技术大量元素,要用多大的容量瓶

培养基配制程序如下：

1. 将贮存的各种母液按顺序依次放好。

2. 将各种洁净的玻璃器皿如培养瓶、量筒、烧杯、吸管、玻璃棒、漏斗等，放在指定的位置。准备好蒸馏水或无离子水及瓶盖或封口膜、包纸、橡皮筋等。

3. 称取规定量的琼脂和蔗糖，将琼脂置于精钢锅或者电饭煲中，加水至培养基最终容积的3/4或1/2，随之加热使之溶解，注意防止煳锅底和溢出。琼脂必须完全溶化，以免造成浓度不均。

琼脂不能过多，不然会导致培养基太硬，含水太少，通气不良;反之，培养基太软，植物材料则难以固定。由于琼脂较难溶解，所以在制备培养基时，应首先加热溶解。

4. 按母液顺序，根据不同母液的浓缩倍数移取规定的量，如配制1L MS培养基移取浓缩10倍的大量元素母液为100mL。母液加完后，再经过计算加入所需要的植物生长调节剂。

在加入母液或生长调节剂时，应事先检查这些药品是否已经变色或产生沉淀，若出现这些现象就停止使用。加完后一并倒入已溶化的琼脂中，并再加入蔗糖。

5. 加蒸馏水定容至培养基的最终容积。

6. pH值调整。培养基的pH值(酸碱度)直接影响培养物对离子的吸收，所以过酸或过碱都会影响植物的生长。此外，琼脂培养基的pH值还影响到其凝固程度，所以当培养基配制好以后，应随即进行pH值的调整(一般pH值为5.6-6.0)。

最好是用酸度计测试，即快又准，如无此设备也可以用精密pH试纸(应在干燥容器中保存，以免吸潮而失效)。若培养基偏酸就用1mol/L的氢氧化钠来调节，偏碱则用1mol/L的盐酸来调节。

经高压蒸汽灭菌后，由于某些成分的分解(如蔗糖)或氧化，使培养基的pH值会降低(一般会降低0.2左右)。有时玻璃皿质量较差，其中一部分物质溶解，也会影响酸度的变化，这些再调整培养基的pH值的时候都要考虑进去。

一般在比较成熟的情况下，会在培养基高压蒸汽灭菌前调高一定的pH值，以便适应灭菌后pH值下降的问题，具体调高多少可根据自身实验摸索。

7. 培养基的分装。琼脂约在40℃以下时凝固，因此配制好的培养基要趁热分装，分装时一般用烧杯、漏斗直接精选分注。若条件允许，用培养基灌装机来分注会更加方便。

分装时要掌握好分注量，多了即浪费又减小培养物的生长空间;少了又会因营养不足而影响生长，一般以占培养容器1/4 - 1/3左右为宜，培养基在培养容器中的厚度约为1.5cm。

分装时要注意不要将培养基沾到管壁上，以免引起污染。分装后立即塞上棉塞或者盖上瓶盖或封好封口膜，并在培养瓶上贴标签或用记号笔在瓶壁上作好标注，然后进行灭菌。

Ⅳ 植物克隆用母液的配制和培养基的配制

为了避免每次配制培养基都要对几十种化学药品进行称量，应该将培养基中的各种成分，按原量10倍、100倍或1000倍称量，配成浓缩液，这种浓缩液叫做母液。这样，每次配制培养基时，取其总量的1/10、1/100、1/1000，加以稀释，即成培养液。现将培养液中各类物质制备母液的方法说明如下。
(1)大量元素。大量元素包括硝酸铵等用量较大的几种化合物。制备时，按表中排列的顺序，以其10倍的用量，分别称出并进行溶解，以后按顺序混在一起，最后加蒸馏水，使其总量达到1升，此即大量元素母液。
(2)微量元素。因用量少，为称量方便和精确起见，应配成100倍或1000倍的母液。配制时，每种化合物的量加大100倍或1000倍，逐次溶解并混在一起，制成微量元素母液。
(3)铁盐。铁盐要单独配制。由硫酸亚铁（FeSO4·7H2O）5.57克和乙二胺四乙酸二钠（Na—EDTA）7.45克溶于1升水中配成。每配1升培养基，加铁盐5毫升。
(4)有机物质。主要指氨基酸和维生素类物质。它们都是分别称量，分别配成所需的浓度（0.1～1.0毫克/毫升），用时按培养基配方中要求的量分别加入。
(5)植物激素。最常用的有生长素和细胞分裂素。这类物质使用浓度很低，一般为0.01～10毫克/升。可按用量的100倍或1000倍配制母液，配制时要单个称量，分别贮藏。
配制植物生长素时，应先按要求浓度称好药品，置于小烧杯或容量瓶中，用1～2毫升0.1N（克当量浓度）氢氧化钠溶解，再加蒸馏水稀释至所需浓度。配制细胞分裂素时，应先用少量0.5或1N的盐酸溶解，然后加蒸馏水至所需量。
以上各种混合液（母液）或单独配制药品，均应放入冰箱中保存，以免变质、长霉。至于蔗糖、琼脂等，可按配方中要求，随称随用。
培养基的配制（1）
称取规定数量的琼脂和蔗糖，加入一定量的蒸馏水，加热使其溶解。（2）在烧杯中加入规定量的各种母液，包括生长调节物质和其他的特殊补加物。（3）
将母液混合物加入融化的琼脂中，再加入糖类物质，定容至所需体积，搅匀。（4）
用1mol/L的氢氧化钠和盐酸调节pH值。（5）趁热将培养基分装到所选用的培养容器中。（6）用棉塞或封口膜盖住瓶口。（7）在121-126℃灭菌15-20min。（8）灭菌后，待压力归零后将培养基取出让其凝固。

Ⅵ MS培养基一共有几种母液分别什么组分，如何配置

培养基母液的配制和保存 MS培养基含有近30种营养成分，为了避免每次配制培养基都要对这几十种成分进行称量，可将培养基中的各种成分，按原量的20倍或200倍分别称量，配成浓缩液，这种浓缩液叫做培养基母液。
这样每次使用时，取其总量的1/20（50 mL）或1/200（5 mL），加水稀释，制成培养液。现将制备培养基母液所需的各类物质的量列出，供配制时使用。大量元素（母液Ⅰ） mg/LNH4NO333 000KNO338 000CaCl2·2H2O8 800MgSO4·7H2O 7 400KH2PO4 3 400微量元素（母液Ⅱ）KI 166H3BO3 1 240MnSO4·4H2O 4 460ZnSO4·7H2O 1 720Na2MoO4·2H2O 50CuSO4·5H2O 5CoCl2·6H2O 5铁盐（母液Ⅲ）FeSO4·7H2O5 560Na2-EDTA·2H2O 7 460有机成分（母液Ⅳ）ⅣA肌醇20 000ⅣB烟酸100盐酸吡哆醇（维生素B6） 100盐酸硫胺素（维生素B1） 20甘氨酸 400以上各种营养成分的用量，除了母液Ⅰ为20倍浓缩液外，其余的均为200倍浓缩液。母液Ⅰ、母液Ⅱ及母液Ⅳ的配制方法是：每种母液中的几种成分称量完毕后，分别用少量的蒸馏水彻底溶解，然后再将它们混溶，最后定容到1 L。母液Ⅲ的配制方法是：将称好的FeSO4·7H2O和Na2-EDTA·2H2O分别放到450 mL蒸馏水中，边加热边不断搅拌使它们溶解，然后将两种溶液混合，并将pH调至5.5，最后定容到1 L，保存在棕色玻璃瓶中。各种母液配完后，分别用玻璃瓶贮存，并且贴上标签，注明母液号、配制倍数、日期等，保存在冰箱的冷藏室中。MS培养基中还需要加入：2，4-二氯苯氧乙酸（2，4-D）、萘乙酸(NAA）、6-苄基嘌呤（6-BA）等植物生长调节物质，并且分别配成母液（0?1 mg/mL）。其配制方法是：分别称取这3种物质各10 mg，将2，4-D和NAA用少量（1 mL）无水乙醇预溶，将6-BA用少量（1 mL）的物质的量浓度为0.1 mol/L的NaOH溶液溶解，溶解过程需要水浴加热，最后分别定容至100 mL，即得质量浓度为0.1 mg/mL的母液。配制培养液 用量筒或移液管从各种母液中分别取出所需的用量：母液Ⅰ为50 mL，母液Ⅱ、Ⅲ、ⅣA和ⅣB各5 mL。再取2，4-D 5 mL、NAA 1 mL，与各种母液一起放入烧杯中。

Ⅶ 培养基的母液的化学成分主要是什么，用量是多少

1、大量元素母液的配制

各成分按照表1培养基浓度含量扩大10倍用天平称取，用蒸馏水分别溶解，按顺序逐步混合。后用蒸馏水定容到 1000ml的容量瓶中，即为10倍的大量元素母液。到入细口瓶，贴好标签保存于冰箱中。配制培养基时，每配1L培养基取此液100ml。

表1 MS培养基大量元素母液制备

Ⅷ 培养基中母液的配制有哪几种方法

培养基的配制应遵循一定的方法和程序，如果每次配制都要按着成分表依次称量，既费时，又增加了多次称量的误差。

为了提高配制培养基的工作效率，一般将常用的基本培养基先配制成10倍或100倍液或更高倍数的贮备液或母液（stocksolution）。

母液的配制常常有两种方法。一是将培养基的每个组分配成单一化合物母液，一是配成几种不同化合物的混合母液。

前者便于配制不同种类的培养基，后者在大量配制同种培养基时省时、省力。以MS培养基配制为例，说明母液配制过程中应注意的问题。该配方中除了蔗糖和琼脂外，还包括有19种成分，其中大多数化合物带有若干水分子，如果是用不同水分含量的同种化合物代替，则须重新计算其正确用量。通常配制四种贮备母液：大量元素（浓缩20倍）、微量元素（浓缩200倍）、铁盐（浓缩200倍）、除蔗糖外的有机物质（浓缩200倍）。在制备这几种母液时，要避免发生沉淀，通常把每种试剂单独溶解后（尤其是CaClsubscript2subscript，易与SOsuperscript2-、POsuperscript3-形成硫酸钙或磷酸钙的不溶物），再与别的也已经完全溶解的药品混合，混合已溶解的各种无机盐时还应注意先后顺序。Fesuperscript2+superscript易与某些阴离子形成沉淀而失效，故铁元素需单独配制成螯合铁母液。

各种生长调节物质的母液应分别配制，应先把它们溶解在很少量的适当溶剂中，可加热助溶，然后再加水定容。母液的浓度一般宜配制成1mmolL或10mmolL。

Ⅸ 暑假我想使用植物组织培养技术，你知道它详细的操作过程吗

植物组织培养的步骤
一、培养基配制
现以MS培养基为例介绍配置培养基的主要过程。
1、配制几种母液
（1）配制MS大量元素母液 一般将大量元素分别配制成100倍的母液，使用时再分别稀释100倍。 分别称取 NH4NO3 165g KH2PO4 17g KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g MgSO4·7H2O 37g 各自配成1L的母液。倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 （2）配制MS微量元素母液 一般将微量元素配制成100倍母液。 依次称取 KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025g H3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025g MnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025g ZnSO4·7H2O 0.86g 配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于称取量很小，如果天平精确度没有达到万分之一，可先配成调整液。 分别称取 CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g 各自配成100ml的调整液，然后取5ml就还有0.0025g的量。
（3）配制MS有机母液 一般配制成100倍MS有机母液。 依次称取 肌醇 10g 盐酸硫胺素（VB1） 0.01g 烟酸 0.05g 甘氨酸 0.2g 盐酸吡哆醇（VB6） 0.05g 配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。
（4）配制MS铁盐母液 一般配制成100倍MS铁盐母液。 依次称取 EDTA二钠 3.73g FeSO4·7H2O 2.78g 配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 所以MS母液有5种大量元素母液，加上MS微量元素母液、MS有机母液和MS铁盐母液，共8种母液。 激素母液的配制 各种生长素和细胞分裂素要单独配制，不能混合在一起，生长素类一般要先用少量95%的酒精或1当量的NaOH溶解，细胞分裂素一般要先用1当量的盐酸溶解，然后再加蒸馏水定容。一般取100mg配成100ml母液。
2、配制培养基 以配置1L MS培养基为例，按顺序进行如下操作：
（1）先在烧杯中放入一些蒸馏水。 （2）分别取上面八种母液10ml倒入。 （3）一般称取30g蔗糖倒入，搅拌溶解。 （4）加蒸馏水用量筒定溶至1L。 （5）按设计好的方案添加各种激素，由于激素的用量很小，而且激素对组培植物的生长至关重要。所以有条件的话最好用微量可调移液器吸取，减少误差。 （6）用精密试纸或酸度计调整PH至5.7-5.8。（有条件的话使用酸度计，比较精确） 可配1当量的HCL和1当量的NaOH用来调溶液PH值。 1当量HCL配制：用量筒量取8.3ml配成100ml溶液。 1当量NaOH配制：称取NaOH 4g 配成100ml溶液。 （7）称取5g左右琼脂粉（质量好的琼脂粉),倒入上面配好的溶液中，放在电炉上加热至沸腾，直到琼脂粉熔化。 （8）稍微冷却后，分装入培养容器中。无盖的培养容器要用封口膜或牛皮纸封口，用橡皮筋或绳子扎紧。 （9）放入消毒灭菌锅灭菌，灭菌20分钟左右。 （10）灭菌后从灭菌锅中取出培养基，平放在实验台上令其冷却凝固。
二、灭菌
灭菌是组织培养重要的工作之一。
1、培养基用湿热灭菌 培养基在制备后的24小时内完成灭菌工序。高压灭菌的原理是：在密闭的蒸锅内，其中的蒸汽不能外溢，压力不断上升，使水的沸点不断提高，从而锅内温度也随之增加。在0.1MPa的压力下，锅内温度达121℃。在此蒸汽温度下，可以很快杀死各种细菌及其高度耐热的芽孢。 注意完全排除锅内空气，使锅内全部是水蒸气，灭菌才能彻底。高压灭菌放气有几种不同的做法，但目的都是要排净空气，使锅内均匀升温，保证灭菌彻底。常用方法是：关闭放气阀，通电后，待压力上升到0.05MPa时，打开放气阀，放出空气，待压力表指针归零后，再关闭放气阀。 关阀再通电后，压力表上升达到0.1MPa时，开始计时，维持压力0.1-0.15MPa，20分钟。 按容器大小不同，保压时间有所不同，见表。该表所列数字是彻底灭菌很保险的数字，如果容器体积较大，但是放置的数量很少，也可以减少时间。
三、接种
无菌操作可按以下步骤进行： （1）在接种4小时前用甲醛熏蒸接种室，并打开其内紫外线灯进行杀菌； （2）在接种前20分钟，打开超净工作台的风机以及台上的紫外线灯； （3）接种员先洗净双手，在缓冲间换好专用实验服，并换穿拖鞋等； （4）上工作台后，用酒精棉球搽拭双手，特别是指甲处。然后搽拭工作台面； （5）先用酒精棉球搽拭接种工具，再将镊子和剪刀从头至尾过火一遍，然后反复过火尖端处，对培养皿要过火烤干； （6）接种时，接种员双手不能离开工作台，不能说话、走动和咳嗽等； （7）接种完毕后要清理干净工作台，可用紫外线灯灭菌30分钟，若连续接种，每5天要大强度灭菌一次。 接种是将已消毒好的根、茎、叶等离体器官，经切割或剪裁成小段或小块，放入培养基的过程。现将接种前后的程序连贯地介绍。
无菌接种步骤： （1）将初步洗涤及切割的材料放入烧杯，带入超净台上，用消毒剂灭菌，再用无菌水冲洗，最后沥去水分，取出放置在灭过菌的纱布上或滤纸上。 （2）材料吸干后，一手拿镊子、一手拿剪刀或解剖刀，对材料进行适当的切割。如叶片切成0.5cm平方的小块；茎切成含有一个节的小段。微茎尖要剥成只含1-2片幼叶的茎尖大小等。在接种过程中要经常灼烧接种器械，防止交叉污染。 （3）用灼烧消毒过的器械将切割好的外植体插植或放置到培养基上。具体操作过程（以试管为例）是：先解开包口纸，将试管几乎水平拿着，使试管口靠近酒精灯火焰，并将管口在火焰上方转动，使管口里外灼烧数秒钟。若用棉塞盖口，可先在管口外面灼烧，去掉棉塞，再烧管口里面。然后用镊子夹取一块切好的外植体送入试管内，轻轻插入培养基上。若是叶片直接附在培养基上，以放1-3块为宜。至于材料放置方法除茎尖、茎段要正放（尖端向上）外，其他尚无统一要求。接种完后，将管口在火焰上再灼烧数秒种。并用棉塞，塞好后，包上包口纸，包口纸里面也要过火。
四、培养
1、培养方法 （1）固体培养法 即用琼脂固化培养基来培养植物材料的方法。是现在最常用的方法。虽然该方法设备简单，易行，但养分分布不均，生长速度不均衡，并常有褐化中毒现象发生。 （2）液体培养法 即用不加固化剂的液体培养基培养植物材料的方法。由于液体中氧气含量较少，所以通常需要通过搅动或振动培养液的方法以确保氧气的供给，采用往复式摇床或旋转式摇床进行培养，其速度一般为50-100r/min，这种定期浸没的方法，既能使培养基均一，又能保证氧气的供给。
2、培养步骤 （1）初代培养 初代培养旨在获得无菌材料和无性繁殖系。即接种某些外植体后，最初的几代培养。初代培养时，常用诱导或分化培养基，即培养基中含有较多的细胞分裂素和少量的生长素。初代培养建立的无性繁殖系包括：茎梢、芽丛、胚状体和原球茎等。
五、驯化移栽
试管苗移栽是组织培养过程的重要环节，这个工作环节做不好，就会造成前功尽弃。为了做好试管苗的移栽，应该选择合适的基质，并配合以相应的管理措施，才能确保整个组织培养工作的顺利完成。 1、移栽用基质和容器 （1）河砂 （2）草炭土 （3）腐殖土 （4）容器 2、移栽前的准备 移栽前可将培养物不开口移到自然光照下锻炼2-3天，让试管苗接受强光的照射，使其长得壮实起来，然后再开口练苗1-2天，经受较低湿度的处理，以适应将来自然湿度的条件。 3、移栽和幼苗的管理 从试管中取出发根的小苗，用自来水洗掉根部粘着的培养基，要全部除去，以防残留培养基滋生杂菌。但要轻轻除去，应避免造成伤根。移植时用一个筷子粗的竹签在基质中插一小孔，然后将小苗插入，注意幼苗较嫩，防止弄伤，栽后把苗周围基质压实，栽前基质要浇透水。栽后轻浇薄水。再将苗移入高湿度的环境中。保证空气湿度达90%以上。 （1）保持小苗的水分供需平衡。在移栽后5-7天内，应给予较高的空气湿度条件，使叶面的水分蒸发减少，尽量接近培养瓶的条件，让小苗始终保持挺拔的状态。保持小苗水分供需平衡首先营养钵的培养基质要浇透水，所放置的床面也要浇湿，然后搭设小拱棚，以减少水分的饿蒸发，并且初期要常喷雾处理，保持拱棚薄膜上有水珠出现。当5-7天后，发现小苗有生长趋势，可逐渐降低湿度，减少喷水次数，将拱棚两端打开通风，使小苗适应湿度较小的条件。约15天以后揭去拱棚的薄膜，并给予水分控制，逐渐减少浇水，促进小苗长得粗壮。 （2）防止菌类滋生。由于试管苗原来的环境是无菌的，移出来以后难以保持完全无菌，因此，应尽量不使菌类大量滋生，以利成活。所以应对基质进行高压灭菌或鸿烤灭菌。可以适当使用一定浓度的杀菌剂以便有效的保护幼苗，如多菌灵、托布津，浓度800-1000倍，喷药宜7-10天一次。在移苗时尽量少伤苗，伤口过多，根损伤过多，都是造成死苗的原因。喷水时可加入0.1%的尿素，或用1/2MS大量元素的水溶液作追肥，可加快苗的生长与成活。 （3）一定的温、光条件。 试管苗移栽以后要保持一定的温光条件，适宜的生根温度是18-20℃，冬春季地温较低时，可用电热线来加温。温度过低会使幼苗生长迟缓，或不易成活。温度过高会使水分蒸发，从而使水分平衡受到破坏，并会促使菌类滋生。 另外在光照管理的初期可用较弱的光照，如在小拱棚上加盖遮阳网或报纸等，以防阳光灼伤小苗和增加水分的蒸发。当小植株有了新的生长时，逐渐加强光照，后期可直接利用自然光照。促进光合产物的积累，增强抗性，促其成活。 （4）保持基质适当的通气性。 要选择适当的颗粒状基质，保证良好的通气作用。在管理过程中不要浇水过多，过多的水应迅速沥除，以利根系呼吸。 综上所述，试管苗在移栽的过程中，只要把水分平衡、适宜的介质、控制杂菌和适宜的光、温条件控制好，试管苗是很容易移栽的。