小鼠灌胃所用的仪器有哪些

A. 小鼠如何灌胃

小鼠的捉拿方法是对的，用食指和拇指捏住小鼠的颈部皮肤，把小鼠的尾巴压在无名指下，捏紧就行。
1-2ml注射器和16号兽用针头，针尖磨钝，针头长4-5cm
从鼠口角进入，紧贴上颚进入食管，进针 深度在体外测量，一般小鼠2-3cm
注意手法上有个技巧，灌胃针送到咽喉处手腕要大鼠的后脑方向压一下，切记不可使用暴力。

B. 大鼠灌胃技巧是什么

技巧：

头部一定要抓准。颈部稍前，耳朵下方，摸到这个位置后，食指弯曲，与拇指配合抓住，其余手指抓住背部皮肤，能抓多少抓多少。成功的话，大鼠是头部扬起，颈部皮肤紧绷，嘴、咽部、食管基本在一条直线上。

一般是大鼠抓起来后，上下摇晃两下，让它明白，这是灌胃了，久而久之也就不会有恐惧心理。抓得时候不要用很大力，尤其是背部皮肤，是用手指和手掌攥住，不是用指头扣住。

从嘴角进入，进入气管的感觉是不一样的，有阻力，且针头进入的很短，大鼠会剧烈挣扎。进入胃部会很顺畅，大鼠情绪稳定，有的会有吞咽动作。气管即使是进入一部分，大鼠都会很难受，难受当然要动了。所以关键是在咽部的时候，要确保针是进入的食管。这就是大家经常说的，紧贴后壁进针。

因为贲门处有一个褶皱，针头在进入胃时，操作不当，大鼠会剧烈挣扎，并且在这里，针管会有阻力。因而有人会认为进入气管。其实在这里很好辨别，气管进入一小段，大鼠都会剧烈挣扎，在贲门处时，针管已经进入很大一段了，所以辨别不难。

怎么样在进入贲门时，大鼠不会挣扎呢？这个没有具体的办法，只能自己摸索，比如小幅度的前后摇晃下，或者左右摇晃下。这就和你抓大鼠的姿势有关系了，毕竟不能每个大鼠都抓的很完美，所以方法就不一定了。

最后有一个问题很重要，就是咽部不要多次进针，如果力气很大，大鼠挣扎，很容易造成咽部水肿，以后灌胃就很难了。

大鼠灌胃是在清醒状态下进行的，不需要麻醉。大鼠的灌胃针长约6～8cm，直径约1.2mm。

大鼠灌胃时，右手持灌胃注射器，左手拇指和食中二指相对，抓住大鼠颈部皮肤，使大鼠的头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠的尾巴，就可以实施灌胃操作了，其余的操作均和小鼠一样。

大鼠一般灌胃量为1ml/100g体重，因此一般大鼠灌入2ml是可以的。大鼠的灌胃给药体积一般为5～10ml/kg。但是药物的浓度是需要自己按照动物实验方法学的方法进行换算：200g大鼠对应70kg人的折算系数为0.018。

C. 小鼠灌胃有什么诀窍吗

灌胃最重要的是要老鼠要固定好，手法比较重要。灌苦的中药或者其他西药，会挣扎，所以一定要保证食道是直线的状态。 沿着嘴角进针，在口腔中间找到咽喉，使小鼠仰头，然后贴着咽喉后壁插入，如果正确会十分顺利的整根没入。 垂直体位，深度3cm。

D. 小鼠灌胃的问题，食管直径有多大

这个一般是不好说的，动物的食管是有很大弹性的。可以直接购买的小鼠灌胃针，从可以做实验开始，就都可以灌了。

如果是自己做的话，可以采用先把10ML、20ML注射器达到针头前端磨平或不磨平，这样的直径大小就够了，套上相配套的乳胶管就可以了。

一般是越细越好，但是考虑到中药配置溶液的不均一性和溶解差的问题，一般是要粗一点的。

E. 给老鼠造模对照组灌胃是用生理盐水还是蒸馏水

我认为用生理盐水。

F. 小鼠灌胃 处死 解剖

目的：观察“酒花素油剂”小鼠口服和大鼠皮肤用药的毒性反应。方法：小鼠灌胃给予不同浓度的“酒花素油剂”(各剂量间比值为0.85)，观察死亡情况，用Bliss法计算LD 50 。大鼠背部脱毛，涂以不同浓度的“酒花素油剂”，涂药面积约占体表面积的10%，破损皮肤组用针尖划破表皮。给药后观察大鼠的体重及中毒反应。结果：小鼠口服“酒花素油剂”后的LD 50 为557.06 mg/kg，中毒表现主要为肢体抽搐和呼吸困难。大鼠完整皮肤对浓度为临床用浓度10倍的“酒花素油剂”能较好耐受，破损皮肤对7倍于临床用浓度的“酒花素油剂”亦能较好耐受。结论：“酒花素油剂”口服为低毒性物质，完整皮肤和破损皮肤用药均较为安全。

“酒花素油剂”为上海华光啤酒厂生产的，用于促进慢性疮疡及烧伤创口等愈合的外用制剂。为了考察“酒花素油剂”的安全性，本文拟观察“酒花素油剂”一次给予小鼠口服后所产生的毒性反应及死亡情况，并观察完整皮肤及破损皮肤的大鼠在短期内接触“酒花素油剂”后所产生的毒性反应。

1 材料

1.1 动物：昆明种小鼠，体重18～22 g，雌雄各半；SD大鼠，体重170～230 g，雌雄各半，由第二军医大学实验动物中心提供。

1.2 药品：“酒花素”及中性植物油(溶剂)由华光啤酒厂提供。根据实验要求，将“酒花素”溶于中性植物油中，配制成不同浓度的“酒花素油剂”。

2 实验方法

2.1 小鼠口服LD50〔1〕

根据预试结果，在药物剂量为366～970 mg/kg的范围内，将小鼠按体重均匀分为7组，每组10只(�♀各5只)，各剂量间距为0.85，灌胃给药体积为每10 g体重0.1 ml。另设一溶剂对照组，仅给中性植物油0.8 ml/只。

小鼠禁食12小时后灌胃给药，给药后即开始观察动物的毒性反应情况，及时记录死亡数。死亡动物立即进行解剖，观察内脏器官的病变情况。未死动物连续观察9天，9天后处死，解剖，观察脏器变化。

用Bliss法计算LD 50 ，采用计算机“NDST程序”进行运算。

2.2 大鼠皮肤急性毒性实验〔2〕

实验动物分为完整皮肤和破损皮肤两部分，每个部分又分为大、中、小三个剂量组，剂量间距为0.7，每组10只大鼠。另设溶剂对照组，每组6只大鼠。

大鼠在氯胺酮(90 mg/kg ip)麻醉下，进行背部脱毛(用剃刀仔细剪去背部的毛)，脱毛范围约为4.5 cm×7 cm(约占体表面的10%左右)。在此脱毛区内均匀涂以不同浓度的“酒花素油剂”及溶剂，约0.6 ml/只，涂完后用无毒塑料薄膜覆盖，绷带包扎。破损皮肤组大鼠在背部脱毛区用针尖划破表皮，以渗血为度，然后再涂以不同浓度的“酒花素油剂”。给药后即开始观察动物的全身毒性反应，死亡动物立即进行尸体解剖，肉眼观察各脏器的病变情况，10天后处死大鼠，大体解剖，肉眼观察全身各器官的变化情况。

3 结果

3.1 小鼠口服LD 50

小鼠灌胃给药后，死亡动物约在0.5～2小时内出现呼吸急促、烦躁等表现，随后出现肢体抽搐，死亡前有明显的惊厥表现。死亡一般发生在给药后的1～6小时内，个别发生在12～48小是内。死后立即尸检可见，小鼠因死前的肌肉强直而表现为尸体僵硬，心脏停跳于收缩状态。内脏重要器官(心、肺、肝、脾、肾及消化道等)未见充血、水肿及明显的器质性变化。存活动物多数有一过性的呼吸急促表现，24小时内活动稍差，食欲减少。24小时(个别48小时)后逐渐恢复活动和摄食，一般情况良好，无其他不良反应的表现发生。连续观察9天后处死小鼠，大体解剖未见肉眼可见的病理变化。溶剂对照组10只小鼠给药后无明显的毒性反应出现，观察10天后处死，大体解剖亦无异常发现。

各剂量组的死亡情况见表1，死亡率无明显的性别差异。

用Bliss法计算得LD 50 =577.06 mg/kg,95%可信限范围为505.74～658.43 mg/kg。

3.2 大鼠皮肤急性毒性实验

各剂量组大鼠的死亡情况及给药前后的体重变化情况见表2。

表1 小鼠口服“酒花素油剂”后LD 50 计算(Bliss法)

剂量(mg/kg)
对数剂量(X)
动物数(只)
死亡动物数(只)
死亡率(%)
机率单位(Y)

970
2.987
10
10
100
6.75

824
2.916
10
8
80
6.20

701
2.846
10
7
70
5.66

596
2.775
10
6
60
5.11

506
2.704
10
4
40
4.56

430
2.633
10
2
20
4.01

366
2.563
10
0
0
3.46

表2 大鼠皮肤用“酒花素油剂”后的毒性反应

组
别
药物浓度(%)
动物数(只)
死亡动物数(只)
体重 (g,x±s)

用药前 用药后
完
整
皮
肤
A
53.67
10
0
206±19
210±24

B
37.57
10
0
207±21
220±20

D
溶剂
6
0
198±19
206±22

破
损
皮
肤
A
53.67
10
2
200±20
204±23

B
37.57
10
0
202±18
207±21

C
26.30
10
0
198±19
199±24

D
溶剂
6
0
206±22
208±20

在完整皮肤的大鼠中，两个用药组及溶剂对照组均无明显的毒性表现，用药后饮食、活动无明显变化。各组动物给药局部均未发现明显的红、肿等刺激反应，1周后脱毛区开始长毛。连续观察10天后处死大鼠，大体解剖未见明显的脏器异常变化。

破损皮肤大鼠用药后，大剂量组在4～24小时内有2只死亡，死前出现明显的呼吸困难及轻度肌肉抽搐，死后尸体解剖无明显的异常发现。另有两只大剂量组及1只中剂量组的大鼠在用药后8～12小时内出现一过性的呼吸困难。其余各用药组及溶剂对照组的大鼠均未见明显的毒性反应，仅少数动物在用药当天食欲稍差。连续观察10天，大鼠饮食、活动均无异常，体重变化亦不明显。大鼠皮肤破损区创口第二天开始结痂，无明显的红肿及溃烂表现，亦无感染发生。创口约1周左右愈合，无明显疤痕。观察10天，部分大鼠脱毛局部已开始长毛，10天后处死，大体解剖未发现肉眼可见的异常变化。

4 讨论

酒花素是从啤酒花中提取的有效成分，主要由蛇麻酮、草酮等组成。已有的研究资料表明，酒花素有一定的抗菌和促进肉芽组织增生的作用。本实验的结果显示，大鼠在用药面积占体表面积10%的情况下，破损皮肤对浓度为26.30%的“酒花素油剂”能较好耐受，对37.57%的浓度亦能耐受，且破损皮肤创口愈合较快，无感染发生。该两浓度分别为临床用药浓度的5倍和7倍(临床用药浓度为5%)。完整皮肤对于临床用药浓度10倍剂量的“酒花素油剂”亦能耐受，不出现明显的中毒反应。作为溶剂的中性植物油用在破损皮肤和完整皮肤上均无明显的毒性反应。小鼠口服该药的LD 50 为577.06 mg/kg，属低毒物质。以上结果提示，“酒花素油剂”临床应用较为安全。

G. 小鼠灌胃有没有好的方法

左右大拇指和食指抓住小鼠耳朵那里的皮，无名指和小拇指扣住后腿和尾巴。不要让小鼠四处蹭。右手灌胃时，个人体会是针顺着小鼠门牙旁边插进去，弯的一面对着自己，顺着针的曲线滑下去。中间老鼠挣扎不要把针取出来，可以停顿一下，观察老鼠的反应，看是否插到气管里面。一般进针3到5CM，就可以打药OVER了。一般注意2点就差不多了，抓老鼠要快，不然弄久了小鼠可以激怒，2是不要打药打进气管，假如是做亚慢性实验的话你会很惨，第二天跑过去一看老鼠死了。

H. 小鼠和大鼠灌胃应该用什么针头啊

有专门的灌胃针头卖，一般大小鼠的可以通用。如果没有，又要急用可以用12或16号注射器针头，钳去尖端，磨平后也可以。

I. 小鼠灌胃怎么弄呢

小鼠专用灌胃针由注射器和喂管组成，喂管长约1nm，喂管尖端焊有一金属小圆球，金属球中空，用途是防止喂管插入时造成损伤。金属球弯成20度角，以适应口腔与食道之间弯曲。将喂管插头紧紧连接在注射器的接口上，吸入定量的药液；左手捉住小鼠，右手拿起准备好的注射器。将喂管针头尖端防放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，喂管会顺着食管滑入小鼠的胃，插入深度约3cm。用中指与拇指捏住针筒，食指按着针竿的头慢慢往下压，即可将注射器忠的药液灌入小鼠的胃中。在插入过程中如遇到阻力或可看见1/3的针管，则江喂管取出重新插入，因为这时灌胃并没有插入胃中。
尾静脉注射比较困难，很难把握。建议采用其他注射方式

J. 高中生物实验中，给老鼠灌胃是用生理盐水还是蒸馏水

给老鼠灌胃当然是用生理盐水了。生理盐水。是与老鼠的细胞里面的细胞液浓度类似，不会导致细胞失水。而如果是关真牛水的话，它的浓度比较低老鼠可能会水肿。